eredmények és megbeszélés
az oltás napján a steril, puffer nélküli burgonya dextróz agar (PDA) pH-ja 5,63 volt, míg a steril pufferolt PDA pH-ja 3,51 és 9,35 között mozgott. Négyhetes szobahőmérsékleten történő inkubálás után (25 db C) a steril agar pH-ja csökkent (0,19) a puffer nélküli, trisz-pufferelt és trisz-maleát pufferelt PDA esetében, és emelkedett (0,24-ig) a citrát-foszfát pufferelt és karbonát-bikarbonát pufferelt PDA-n (1.táblázat).
1.táblázat.
steril burgonya-dextróz-agar pH-értéke.
közepes | a puffer várható pH-ja | tényleges pHa | |
---|---|---|---|
steril Agar | |||
0. nap | nap 28 | ||
puffer nélküli PDA | Nincs adat | 5.63 | 5.47 |
Tris pufferelt PDA | 7.20 | 6.61 | 6.50 |
8.00 | 7.61 | 7.59 | |
9.00 | 8.24 | 8.19 | |
citrát-foszfát pufferelt PDA | 3.00 | 3.51 | 3.69 |
4.00 | 4.28 | 4.49 | |
5.00 | 5.17 | 5.40 | |
6.00 | 6.07 | 6.31 | |
7.00 | 7.01 | 7.23 | |
karbonát-bikarbonát pufferelt PDA | 9.20 | 9.07 | 9.13 |
10.00 | 9.25 | 9.26 | |
10.70 | 9.35 | 9.39 | |
trisz-maleát pufferelt PDA | 5.20 | 5.21 | 5.02 |
6.00 | 5.84 | 5.75 | |
7.00 | 6.53 | 6.45 | |
8.00 | 7.37 | 7.30 | |
8.60 | 7.91 | 7.83 |
átlagosan három minta látható.
a puffer nélküli PDA-n (pH 5,63) lévő telepek négy hét után elérték a 60 mm átmérőt. Amikor a PDA pH-ját megemelték a Tris pufferrel (pH 6,61, 7,61 és 8,24), az átlagos kolóniaméretek magasabbak voltak a nem pufferelt PDA-val összehasonlítva (1.és and2A. ábra).2A). Perithecia voltak jelen a puffer nélküli PDA és az összes Tris pufferelt média négy hétig. Aszkospórákat figyeltek meg négy hét után a nem pufferolt PDA-n és a Tris pufferelt PDA-n 6,61 és 7,61 pH-n, de nem 8,24 pH-n. Az oltást követő nyolc héten belül nem figyeltek meg aszkospórákat a Tris pufferolt PDA-n, 8,24 pH-n (2. táblázat).
a C kolónia átmérőinek összehasonlítása. globosum pufferelt és puffer nélküli burgonya-dextróz-agaron. Az egyes táptalajok tényleges pH-ja az oltás napján az x tengelyen szerepel. A kolónia átmérőit minden héten megmértük. Az egyes lemezek maximális átmérője 83 mm volt. az átlag átlagát és standard hibáját mutatjuk be (n = 15 lemez).
fényképek A C. globosum kolóniákról a 4.héten trisz pufferelt és nem pufferelt burgonyadextróz-agaron (a), citrát-foszfáttal pufferelt burgonyadextróz-agaron (b) és trisz-maleáttal pufferelt burgonyadextróz-agaron (c). Az egyes agar lemezek közepét 500 C. globosum spórával oltottuk be, amelyek 20 ml vízben voltak szuszpendálva. Ezek a fényképek a C. globosum kolóniákkal ellátott agar lemezek elülső és hátsó oldalát ábrázolják négy hetes szobahőmérsékleten történő inkubálás után.
táblázat 2
a pH hatása a sporulációra.
közepes | a puffer várható pH-ja | szalagcsúszda eredményei | |||||
---|---|---|---|---|---|---|---|
perithecia jelenléte | aszkospórák jelenléte | ||||||
4. hét | 6. hét | 8. hét | 4. hét | 6. hét | Hét 8 | ||
puffer nélküli PDA | Nincs adat | + | + | + | + | + | + |
Tris pufferelt PDA | 7.2 | + | + | + | + | + | + |
8.0 | + | + | + | + | + | + | |
9.0 | + | + | + | − | − | − | |
Citrate-phosphate buffered PDA | 3.0 | − | NT | NT | − | NT | NT |
4.0 | − | + | + | − | − | + | |
5.0 | − | + | + | − | − | + | |
6.0 | − | − | + | − | − | − | |
7.0 | − | + | + | − | − | + | |
karbonát-bikarbonát pufferelt PDA | 9.2 | − | − | − | − | − | − |
10.0 | − | − | − | − | − | − | |
10.7 | − | − | − | − | − | − | |
trisz-maleát pufferelt PDA | 5.2 | − | − | − | + | + | + |
6.0 | + | + | + | + | + | + | |
7.0 | + | + | + | + | + | + | |
8.0 | + | + | + | − | + | + | |
8.6 | + | + | + | + | + | + |
egy Szalaglemezt vettünk egyetlen agar lemezről négy, hat vagy nyolc héttel az oltás után. A perithecia, illetve az ascosporák jelenlétét vagy hiányát “+” vagy “−” jelzi. A nem vett mintákat “NT”jelöli.
citrát-foszfát puffert használtunk a 3,51-től 7,01-ig terjedő pH-értékű PDA előállításához (1.táblázat). A 7,01 pH-n tenyésztett telepek négy héttel az oltás után az egész lemezt (83 mm átmérőjű) lefedték (2b.ábra). Mivel a pH minden táptalajon csökkent, a kolónia mérete csökkent. Négy hét elteltével a telepek 3 pH-n nőttek.Az 51. ábra csak átlagosan 11 mm átmérőt ért el (1.ábra), és a szalaglemezeken nem figyeltek meg kötőjeleket (az adatok nem szerepelnek). 4,28, 5,17, 6,07 és 7,01 pH-érték mellett négy héttel az oltás után nem alakult ki perithecia, de végül nyolc héttel az oltás után alakult ki. Nyolc hét elteltével az aszkospórák 4,28, 5,17 és 7,01 pH-n voltak jelen (2.táblázat).
a karbonát-bikarbonát puffer a PDA pH-ját magasabbra emelte, mint a Tris puffer (pH 9,07, 9,25 és 9,35) (1.táblázat). Az átlagos kolóniaméret minden karbonát-bikarbonát pufferolt közegben alacsonyabb volt, mint a citrát-foszfát pufferelt PDA-nál, 7,01 pH-n (1.ábra). Az oltást követő 4., 6. vagy 8. héten nem figyeltek meg peritheciát vagy aszkospórát (2. táblázat).
a trisz-maleát puffer 5,21-7,91 közötti pH-értékű PDA-t eredményezett (1.táblázat). Két hét elteltével a legnagyobb telepeket a legalacsonyabb pH-n figyelték meg.három és négy héten a legnagyobb átmérőjű telepek PDA-n voltak, pH-ja 7,37 és 7,91 volt (1. és and2C ábra).2C). Négy héten belül számos aszkospórát figyeltek meg 5 pH-n.21-et és 5,84-et, míg a többi trisz-maleát pufferelt PDA-n kevés aszkospórát vagy egyáltalán nem észleltek (az adatok nem jelennek meg). Hat héten belül aszkospórákat állítottak elő minden táptalajon (2.táblázat).
összességében a legnagyobb telepeket semleges pH-n (7,01) kaptuk (1.ábra). Két héttel ezek a telepek szignifikánsan nagyobbak voltak, mint minden más közeg. Négy héttel az egyes táptalajok átlagos kolóniamérete szignifikánsan kisebb volt, kivéve a 6,07, 7,37, 7,61 és 7,91 pH-értéket, szemben a 7,01 pH-val (Az adatok nem jelennek meg). Az egyes csoportok spóráinak teljes számát A korábban leírtak szerint határoztuk meg . Az ascospórák kimutatható szintjét a tizenhét táptalajból a következő háromban figyelték meg az oltás után négy héttel: csoportonként 4 240 000 spóra (azaz öt agar lemez) puffer nélküli PDA-n (pH 5,63); csoportonként 13 500 000 és 2 960 000 spóra trisz-maleáttal pufferelt PDA-n, pH 5,21 és 6,53. A szalaglemezek aszkospórákat mutattak ki négy másik pufferelt közegben (trisz pufferelt PDA 6,61 és 7,61 pH-n; trisz-maleát pufferelt PDA 8,84 és 7 pH-n.91) (2. táblázat), amely a hemacitométer kimutatási határa alatt volt (10 000 spóra/mL). A chaetoglobozinok A és C termelését a HPLC alkalmazásával korábban leírtak szerint értékeltük . A Chaetoglobosin C-t 7,01 pH-n (öt agar lemezenként átlagosan 203 6G) detektáltuk, de semmilyen más pH-értékű közegből nem (3.ábra). A minták egyikében sem mutattak ki chaetoglobosin A – t (az adatok nem szerepelnek).
HPLC kromatogram a kiválasztott csúcs UV-spektrumával. A kromatogram a C metanol kivonatából kapott jelet mutatja. globosum öt citrát-foszfát pufferelt burgonya-dextróz-agar lemezen nőtt 7,01 pH-n négy hétig. A retenciós időket (min) az x tengelyen, a csúcsméreteket (milli-abszorbancia egységekben) az y tengelyen ábrázoljuk. Az UV spektrum (inset) esetében a hullámhosszokat (nanométerben) az x tengelyen, a csúcsméreteket (milli-abszorbancia egységekben) az y tengelyen ábrázoljuk.
kevés tanulmány vizsgálta a környezeti pH hatását a C. globosum növekedésére. A C. globosum növekedésének optimális pH-tartományát korábban 7,1 – 10,4-nek írták le . Eredményeink azt mutatják, hogy ez a gomba különböző pH-értékek tartományában (körülbelül 4,3-9,4) nőhet. Bár a C. globosum 3,51 pH-n nőtt, ezek a kolóniák kis méretűek voltak, és rendellenes morfológiával rendelkeztek (2.ábra). A C. globosum növekedése semleges pH mellett optimális (1.ábra).
a chaetoglobosin C kimutatható szintjét csak a legnagyobb C. globosum kolóniákkal rendelkező táptalajon figyelték meg. Ez a megállapítás összhangban van egy korábbi tanulmány eredményeivel, amelyek arra utalnak, hogy a chaetoglobosinok termelése közvetlenül kapcsolódik a növekedéshez. Miután megvizsgálta a C növekedését. globosum négy kereskedelmi forgalomban kapható táptalajon azt találtuk, hogy a legjobb növekedést támogató táptalaj a és C chaetoglobozinok legmagasabb termelését is támogatta .
kimutatták, hogy a környezeti pH befolyásolja más fonalas gombák metabolittermelését. A legjobban vizsgált szabályozási rendszer az Aspergillus nidulans-ban található, amelyet a PacC nevű transzkripciós faktor irányít . Lúgos körülmények között a PacC aktiválja az alkáli expresszált géneket, például az acvA-t és az ipns-t, amelyek részt vesznek a penicillin szintézisében, és elnyomja a sav expresszált géneket, például az stcU-t, amely részt vesz a szterigmatocisztin szintézisében. A PacC homológokkal rendelkező egyéb fonalas gombák közé tartozik az Aspergillus niger, az Aspergillus oryzae, a Penicillium chrysogenum, az Acremonium chrysogenum , a Sclerotinia sclerotiorum és a Fusarium verticillioides . A PacC-hez hasonló hipotetikus fehérje a C. globosum genomjában található . Feltételezve, hogy ennek a gombának hasonló szabályozási rendszere van, mint az A-ban. nidulans, ezek az eredmények azt sugallják, hogy a chaetoglobosin termelés nem az ellenőrzése alatt áll.
a C. globosum perithecia és ascospores képződése savas környezetben kedvezőnek tűnik, és mesterséges közegben bázikus körülmények között gátolt. Négy hét elteltével az aszkospórák kimutatható szinten voltak jelen a nem pufferolt PDA-n (pH 5,63) és a trisz-maleáttal pufferelt PDA-n (pH 5,21 és 6,53) (2.táblázat). A C. globosum végül pertheciát és aszkospórákat termelt citrát-foszfát pufferolt PDA-n nyolc héttel az oltás után. A Tris pufferelt PDA-n pH-n nem termelődtek aszkospórák 8.24 vagy a karbonát-bikarbonát pufferelt PDA-n 9,07, 9,25 és 9,35 pH-n (2.táblázat). Az is lehetséges, hogy a sporuláció ezen gátlása bázikus pH-n a puffer egyik komponensének jelenléte miatt következik be, bár a mechanizmus jelenleg ismeretlen.