Clemizol und Modulatoren der Serotoninsignalisierung unterdrücken Anfälle beim Dravet-Syndrom

Zusammenfassung

Das Dravet-Syndrom ist eine katastrophale Epilepsie im Kindesalter mit früh einsetzenden Anfällen, verzögerter sprachlicher und motorischer Entwicklung, Schlafstörungen, angstähnlichem Verhalten, schwerem kognitivem Defizit und erhöhtem Todesrisiko. Es wird hauptsächlich durch De-novo-Mutationen des SCN1A-Gens verursacht, das für einen neuronalen spannungsaktivierten Natriumkanal kodiert. Zebrafische mit einer Mutation im SCN1A-Homolog rekapitulieren die spontane Anfallsaktivität und ahmen die beim Dravet-Syndrom beobachteten krampfhaften Verhaltensbewegungen nach. Hier zeigen wir, dass das phänotypische Screening von Wirkstoffbibliotheken in Zebrafisch-scn1-Mutanten schnell und erfolgreich neue Therapeutika identifiziert. Wir zeigen, dass Clemizol an Serotoninrezeptoren bindet und seine antiepileptische Aktivität durch Medikamente, die auf Serotonin-Signalwege wirken, z.B. Trazodon und Lorcaserin, nachgeahmt werden kann. Zeitgleich mit diesen Zebrafisch-Befunden behandelten wir fünf medizinisch schwer behandelbare Dravet-Syndrom-Patienten mit einem klinisch zugelassenen Serotonin-Rezeptor-Agonisten (Lorcaserin, Belviq®) und beobachteten einige vielversprechende Ergebnisse in Bezug auf die Verringerung der Anfallshäufigkeit und / oder Schwere. Unsere Ergebnisse zeigen einen schnellen Weg von der präklinischen Entdeckung bei Zebrafischen über die Zielidentifikation bis hin zu potenziellen klinischen Behandlungen für das Dravet-Syndrom.

Einleitung

Epilepsien im Kindesalter, die als katastrophal eingestuft werden, sind häufig mit einer genetischen Mutation verbunden. Unter diesen wurde das Dravet-Syndrom mit mehr als 600 de-novo-Mutationen in einem einzigen Gen, SCN1A, in Verbindung gebracht (Catterall et al., 2010; Escayg et al., 2010). Kinder mit dem Dravet-Syndrom zeigen bereits im Alter von 6 Monaten Krampfanfälle, eine verzögerte sprachliche und motorische Entwicklung, Schlafstörungen, angstähnliches Verhalten und ein schweres kognitives Defizit (Dravet, 2011). Symptome einer Autismus-Spektrum-Störung wurden ebenfalls berichtet (Li et al., 2011) und das Risiko für einen plötzlichen ungeklärten Tod mit Epilepsie (SUDEP) in dieser Population wird auf das 15-fache höher geschätzt als bei anderen Epilepsien im Kindesalter (Kearney, 2013). Verfügbare Antiepileptika bieten keine ausreichende Anfallskontrolle und resektive neurochirurgische Verfahren sind in der Regel keine Option. Neue Behandlungen für das Dravet-Syndrom bleiben trotz einer gewissen Wirksamkeit in begrenzten klinischen Studien für Cannabidiol (Epidiolex®) und Stiripentol (Diacomit®), die mit kognitiven oder appetitlichen Sicherheitsbedenken verbunden sein können, ein wichtiger ungedeckter Bedarf (Perez et al., 1999; In: Chiron et al., 2000; Detyniecki et al., 2016; Devinsky et al., 2016).

Mutationen in SCN1A, einem Gen, das für die porenbildende α-Untereinheit eines spannungsgesteuerten Natriumkanals (Nav1.1) kodiert, wurden bei fast 85% der Patienten mit Dravet-Syndrom identifiziert (Dravet, 2011). Nav1.1-Kanäle tragen zur schnellen Depolarisation neuronaler Membranen bei, die während der Aktionspotentialerzeugung beobachtet werden (Hodgkin et al., 1952). Mäuse, die heterozygot für eine Funktionsverlustmutation in Nav1.1 sind, entwickeln früh im Leben spontane und temperaturempfindliche Anfälle und sterben vorzeitig um den postnatalen Tag 25 (Yu et al., 2006; Oakley et al., 2009; Cheah et al., 2012). Akute elektrophysiologische Studien an diesen und verwandten Scn1a-defizienten Mäusen deuten auf eine Verringerung der Natriumstromdichte und eine damit verbundene Abnahme der Zündaktivität für eine Subpopulation von GABA-exprimierenden inhibitorischen Neuronen (aber nicht exzitatorischen Hauptzellen) hin, die zu einer verringerten synaptischen Hemmung und Netzwerkübererregbarkeit führen (Yu et al., 2006; Kalume et al., 2007; Han et al., 2012). Diese Hypothese der Interneuronopathie stimmt mit anderen Formen katastrophaler Epilepsien im Kindesalter überein und wurde bei Mäusen bestätigt, bei denen Scn1a selektiv aus Parvalbumin- oder Somatostatin-exprimierenden Interneuron-Subpopulationen deletiert wurde (Dutton et al., 2013; Tai et al., 2014). Autistische Verhaltensweisen wurden auch bei diesen Mäusen berichtet (Han et al., 2012). Interessanterweise berichteten erste Studien an menschlichen exzitatorischen und inhibitorischen Neuronen, die mit induzierter pluripotenter Stammzelltechnologie von zwei Patienten mit Dravet-Syndrom abgeleitet wurden, über Defizite im spannungsaktivierten Natriumstrom für beide Zelltypen, was entweder auf eine homöostatische Kompensation für den frühen Funktionsverlust eines kritischen gehirnspezifischen Natriumkanals hindeutet oder zusätzliche Mechanismen, die zum epileptischen Phänotyp beitragen, der bei diesen Patienten beobachtet wurde (Jiao et al., 2013; Liu et al., 2013).

Obwohl Mäuse und aus humanen induzierten pluripotenten Stammzellen abgeleitete Neuronen zu unserem Verständnis der zugrunde liegenden Pathophysiologie des Dravet-Syndroms beitragen, sind diese Systeme aufgrund der Variabilität dieser Modelle und der Reproduzierbarkeit quantitativer Messungen nicht gut für die schnelle Identifizierung neuer Therapien geeignet. Da Zebrafische ein ideales Wirbeltiermodellsystem für die Durchführung von auf niedermolekularen Phänotypen basierenden Screenings sind (MacRae et al., 2015) und Genmanipulationen zugänglich sind, konzentrierten wir unsere Bemühungen auf eine Zebrafisch-Natriumkanalmutante. Zebrafischmutanten mit einer Funktionsverlust-Missense-Mutation im SCN1A-Ortholog, scn1Lab, wurden in einem Mutagenesescreening identifiziert (Schoonheim et al., 2010). Aufgrund einer ancestralen Duplikation des gesamten Genoms sind Zebrafisch-scn1Lab-Mutanten haploineffizient für Nav1.1 und analog zu Scn1a +/− Mäusen oder Patienten mit Dravet-Syndrom. Krampfhaftes Verhalten und Episoden kurzer interiktaler und lang anhaltender Polyspike-iktal-ähnlicher elektrographischer Entladung werden bei mutierten Larven bereits 3 Tage nach der Befruchtung (dpf) mit Fortschreiten zu robusteren Anfallsphänotypen zwischen 4 und 7 dpf beobachtet (Baraban et al., 2013; Hong et al., 2016). Mutierte Larven sterben vorzeitig ab, zeigen metabolische Defizite (Kumar et al., 2016) und sind resistent gegen viele Antiepileptika (AED) (Dinday et al., 2015). Ähnlich wie bei der klinischen Behandlung des Dravet-Syndroms kann eine gewisse Abschwächung der Anfallsaktivität mit Valproat, Benzodiazepinen, Bromiden, Stiripentol sowie einer ketogenen Diät erreicht werden (Baraban et al., 2013). Mit scn1Lab-mutierten Zebrafischlarven und einer zweistufigen Phänotyp-basierten Screening-Strategie haben wir jetzt mehr als 2300 Verbindungen gescreent. Clemizol, ein Histaminrezeptor (H1) -Antagonist der ersten Generation, wurde als potenter Inhibitor der verhaltens- und elektrographischen Anfallsaktivität identifiziert (Baraban et al., 2013). Antihistaminika sind jedoch bei pädiatrischen Epilepsiepopulationen kontraindiziert (Miyata et al., 2011) und das H1-Rezeptoranalogon im Zebrafisch zeigt weniger als 50% Ähnlichkeit mit dem Menschen (Peitsaro et al., 2007). Hier verwenden wir präklinische Zebrafischmodelle, um zu zeigen, dass Clemizol, aber keine Antihistaminika, antiepileptische Aktivität ausüben. Auf der Grundlage der Ligandenbindung und des zusätzlichen gezielten Wirkstoffscreenings bei scn1-mutierten Zebrafischen identifizierten wir mehrere Serotonin (5-HT) -Modulatoren als wirksam bei der Unterdrückung von Anfällen, darunter zwei von der FDA zugelassene Verbindungen (Trazodon und Lorcaserin). Lorcaserin (Belviq®) wurde Kindern mit Dravet-Syndrom im Rahmen eines Compassionate-Use-Programms verschrieben und führte bei einigen Patienten zu einer verminderten Anfallsaktivität. Wir schlagen vor, dass die Modulation der 5-HT-Signalgebung eine neuartige therapeutische Intervention für diese katastrophale Epilepsie im Kindesalter darstellt.

Materialien und Methoden

Zebrafischpflege

Zebrafische wurden in einer licht- und temperaturkontrollierten Aquakulturanlage unter einer Standard-Hell / Dunkel-Photoperiode von 14:10 h gehalten. Erwachsene Zebrafische wurden untergebracht in 1.5-l-Tanks mit einer Dichte von 5-12 Fischen pro Tank und zweimal täglich gefüttert (trockene Flocke und / oder Flocke, ergänzt mit lebenden Salzgarnelen). Die Wasserqualität wurde kontinuierlich überwacht: Temperatur, 28-30 ° C; pH 7,4-8,0; Leitfähigkeit, 690-710 mS / cm. Zebrafischembryonen wurden in runden Petrischalen in ‚Embryo Medium‘ bestehend aus 0,03% Instant Ocean (Aquarium Systems, Inc.) und 0,0002% Methylenblau in Umkehrosmose-destilliertem Wasser. Zebrafischlarven wurden aus Kreuzungen von Wildtyp- (TL-Stamm) oder scn1Lab (didys552) oder scn1Laa (sa1674) heterozygoten Tieren erhalten, die zum TL-Stamm auskreuzt worden waren. Homozygote scn1Lab-Mutanten (n = 2800) haben Melanosomen dispergiert und erscheinen im Vergleich zu Wildtyp-Larven um 3 dpf sichtbar dunkler. Homozygote scn1Laa-Mutanten wurden zunächst mit verhaltens- und elektrophysiologischen Assays an allen Nachkommen identifiziert (n = 288; Abb. 1) und durch Post-hoc-Polymerase-Kettenreaktion (PCR) bestätigt, da sie Wildtyp-Larven sichtbar ähnlich erscheinen. Die Pflege- und Wartungsprotokolle entsprechen den Anforderungen des Leitfadens für die Pflege und Verwendung von Tieren (ebrary Inc., 2011) und wurden vom Institutional Animal Care and Use Committee genehmigt (Protokoll # AN108659-02).

Abbildung 1

Bestätigung der antiepileptischen Aktivität von Clemizol. (A) Die chemische Struktur von Clemizol. (B) Diagramm, das die Änderung der mittleren Geschwindigkeit von 5 dpf scn1Lab-mutierten Larven zeigt, die mit vier Konzentrationen von Clemizol behandelt wurden. Die Fortbewegung wurde nach einer Belichtung von 30 min (blaue Balken) und 90 min (gelbe Balken) für 10 min aufgezeichnet. Jeder Balken repräsentiert die mittlere Geschwindigkeitsänderung ± SEM aus drei unabhängigen Experimenten mit sechs behandelten Larven. Der Schwellenwert für eine signifikante Geschwindigkeitsabnahme beträgt ≥40% (rote Linie). Schraffierte Balken zeigen an, dass Toxizität beobachtet wurde. (C) Locomotion Tracking Plot für 5 dpf Larven aus einer SCN1LAA heterozygoten Kreuzung. Die Larven wurden hinsichtlich ihres Schwimmverhaltens bewertet (Stadium 0 bis Stadium III). (D) Eine repräsentative lokale Feldpotentialaufzeichnung aus dem Vorderhirn einer in Agar eingebetteten Larve der Stufe III-Klassifikation. Kleine und große amplitude spontane burst entladung beobachtet wurden. (E) Diagramm mit der mittleren Schwimmgeschwindigkeit von 12 Larven, Stadium III ‚mutmaßlichen scn1Laa-Mutanten‘ und ‚mutmaßlichen Geschwisterkontrollen‘. Mutmaßliche scn1Laa-Mutanten wurden durch PCR bestätigt. Die Signifikanz wurde durch Einweg-ANOVA bestimmt, gefolgt von Holm-Sidak-Test. (F) Diagramm mit der Geschwindigkeit unbehandelter scn1Laa-Mutanten (blaue Balken) und anschließender Behandlung mit 250 µM Stiripentol (stp), Diazepam (dzp), Clemizol (clem) und Lamotrigin (ltg) (gelbe Balken). Jeder Balken repräsentiert die mittlere Geschwindigkeit ± SEM. Der gepaarte T-Test des Schülers wurde verwendet, um die Signifikanz zu bestimmen. *P < 0,05; **P < 0,01.

Abbildung 1

Bestätigung der antiepileptischen Aktivität von Clemizol. (A) Die chemische Struktur von Clemizol. (B) Diagramm, das die Änderung der mittleren Geschwindigkeit von 5 dpf scn1Lab-mutierten Larven zeigt, die mit vier Konzentrationen von Clemizol behandelt wurden. Die Fortbewegung wurde nach einer Belichtung von 30 min (blaue Balken) und 90 min (gelbe Balken) für 10 min aufgezeichnet. Jeder Balken repräsentiert die mittlere Geschwindigkeitsänderung ± SEM aus drei unabhängigen Experimenten mit sechs behandelten Larven. Der Schwellenwert für eine signifikante Geschwindigkeitsabnahme beträgt ≥40% (rote Linie). Schraffierte Balken zeigen an, dass Toxizität beobachtet wurde. (C) Locomotion Tracking Plot für 5 dpf Larven aus einer SCN1LAA heterozygoten Kreuzung. Die Larven wurden hinsichtlich ihres Schwimmverhaltens bewertet (Stadium 0 bis Stadium III). (D) Eine repräsentative lokale Feldpotentialaufzeichnung aus dem Vorderhirn einer in Agar eingebetteten Larve der Stufe III-Klassifikation. Kleine und große amplitude spontane burst entladung beobachtet wurden. (E) Diagramm mit der mittleren Schwimmgeschwindigkeit von 12 Larven, Stadium III ‚mutmaßlichen scn1Laa-Mutanten‘ und ‚mutmaßlichen Geschwisterkontrollen‘. Mutmaßliche scn1Laa-Mutanten wurden durch PCR bestätigt. Die Signifikanz wurde durch Einweg-ANOVA bestimmt, gefolgt von Holm-Sidak-Test. (F) Diagramm mit der Geschwindigkeit unbehandelter scn1Laa-Mutanten (blaue Balken) und anschließender Behandlung mit 250 µM Stiripentol (stp), Diazepam (dzp), Clemizol (clem) und Lamotrigin (ltg) (gelbe Balken). Jeder Balken repräsentiert die mittlere Geschwindigkeit ± SEM. Der gepaarte T-Test des Schülers wurde verwendet, um die Signifikanz zu bestimmen. *P < 0,05; **P < 0,01.

Anfallsüberwachung

Bei 5 dpf wurden einzelne Zebrafischlarven in eine einzelne Vertiefung einer klaren 96-Well-Mikroplatte mit flachem Boden gegeben, die Embryomedien enthielt. Die Larven wurden zufällig ausgewählt, da eine Geschlechtsbestimmung in diesem Stadium nicht möglich ist. Mikroplatten wurden in das Nanovision Motion-Tracking-Gerät gelegt und für 20 min bei Raumtemperatur akklimatisiert. Locomotion Plots wurden für jede Vertiefung während einer Aufzeichnungsperiode von 10 min unter Verwendung eines DanioVision-Systems mit EthoVision XT-Software (DanioVision, Noldus Information Technology) erhalten; die Schwellenwertdetektionseinstellungen zur Identifizierung von Objekten, die dunkler als der Hintergrund sind, wurden für jedes Experiment optimiert. Die Krampfbewertung wurde unter Verwendung der folgenden dreistufigen Skala durchgeführt, die für Pentylentetrazol-induzierte Anfälle festgelegt wurde (Baraban et al., 2005): Stadium 0, keine oder sehr geringe Schwimmaktivität; Stadium I, erhöhte, kurze Anfälle von Schwimmaktivität; Stadium II, schnelles ’strudelartiges‘ kreisendes Schwimmverhalten; und Stadium III, paroxysmale Ganzkörper-Klonus-ähnliche Krämpfe und ein kurzer Verlust der Körperhaltung. Wildtyp-Fische werden normalerweise in Stufe 0 oder I bewertet. Die Diagramme wurden für die zurückgelegte Strecke (in Millimetern) und die mittlere Geschwindigkeit (in Millimetern pro Sekunde) analysiert. Wie bereits berichtet (Winter et al., 2008; Baraban et al., 2013) waren Geschwindigkeitsänderungen der empfindlichste Test für das Anfallsverhalten.

Für elektrophysiologische Untersuchungen wurden Zebrafischlarven kurzzeitig mit α-Bungarotoxin (1 mg/ml) gelähmt und in 1,2% iger Agarose immobilisiert; lokale Feldpotentialaufnahmen wurden aus Vorderhirnstrukturen unter Verwendung einer Einzelelektrodentechnik erhalten, wie zuvor beschrieben (Baraban et al., 2005; Hong et al., 2016). Agarose-eingebettete lokale Feldpotentialaufzeichnungssitzungen von 10 bis 30 min wurden für jeden Fisch bei 1 kHz erhalten. Das iZAP-System (Hong et al., 2016) wurde zur nichtinvasiven Langzeitüberwachung von Zebrafischen in Abwesenheit eines Lähmungsmittels verwendet. Das System fängt autonom mehrere Zebrafischlarven unter mehreren integrierten Oberflächenelektroden in den mikrofluidischen Kammern ein. scn1Lab-Larven wurden 5 h lang kontinuierlich überwacht. Das elektrische Feldpotential wurde kontinuierlich bei 1 kHz aufgezeichnet, mit Ausnahme von 2 bis 3 Minuten Pause für den Medienwechsel für die Compound-Behandlung und das Waschen. Die aufgezeichneten Daten wurden unter Verwendung von MATLAB für Feldpotentialdiagramme und Frequenzanalyse analysiert.

Compound Library Screening

Compounds für das Drug Screening wurden von Selleck Chemicals bezogen und als 10 mM DMSO-Lösungen bereitgestellt. Sellecks Ionenkanal-Ligandenbibliothek (Katalog # L2700), GPCR-Verbindungsbibliothek (Katalog # L2200) und eine kundenspezifische 5-HT-Modulationsbibliothek wurden für das Screening verwendet. Die Verbindungen sind in der ergänzenden Tabelle 1 aufgeführt. In allen Arzneimittelbibliotheksbildschirmen wurden Verbindungen codiert und Experimente von Forschern durchgeführt, die für die Art der Verbindung blind waren. Baseline-Aufzeichnungen des Fortbewegungsverhaltens wurden von Mutanten in Embryonenmedien erhalten, wie oben beschrieben; Nach einem Lösungswechsel zu einer Testverbindung und einer Äquilibrierungsperiode von 20 min wurde dann ein zweites Fortbewegungsplot erhalten. Verbindungen für Fortbewegungsstudien wurden in embryonalen Medien gelöst und in einer Konzentration von 250 µM mit einer endgültigen DMSO-Konzentration von 2,5% getestet.

Kriterien für eine positive Trefferbezeichnung waren wie folgt: (i) eine Abnahme der mittleren Geschwindigkeit von ≥40%; und (ii) eine Verringerung des Anfallsverhaltens im Stadium 0 oder Stadium I im Bewegungsdiagramm für mindestens 50% der Testfische. Jede Testverbindung, die im Locomotion Assay als ‚positiver Treffer‘ eingestuft wurde, wurde nach einer 90-minütigen Arzneimittelexposition durch direkte Visualisierung auf einem Stereomikroskop auf Toxizität untersucht. Toxizität (oder Mortalität) wurde definiert als kein sichtbarer Herzschlag oder Bewegung als Reaktion auf externe Stimulation bei mindestens 50% der Testfische. Übererregbarkeit wurde definiert als eine Verbindung, die bei mindestens 50% der Testfische eine ≥40% ige Erhöhung der Schwimmgeschwindigkeit und / oder der Anfallsaktivität im Stadium III verursacht. Positive Treffer, die im primären Locomotion-Screening identifiziert wurden, wurden unter Verwendung der Locomotion-Screening-Methode in einem zweiten Assay mit einer unabhängigen Kupplung von Zebrafischen bestätigt. Die Verbindungen wurden dann separat von Sigma-Aldrich gekauft und mit der Locomotion-Screening-Methode zum dritten Mal an einer unabhängigen Kupplung von Zebrafischen getestet. Arzneimittel, die die mittlere Schwimmgeschwindigkeit über dem Schwellenwert reduzierten und in den drei unabhängigen Fortbewegungstests nicht toxisch waren, wurden unter Verwendung des elektrophysiologischen Tests weiter analysiert. In elektrophysiologischen Studien wurden Medikamente zunächst in einer Konzentration von 250 µM mit dem Locomotion Assay bestätigt und dann der gleiche Zebrafisch mit einer lokalen Feldpotentialaufzeichnung ausgewertet. Alle Screenings wurden mit codierten Verbindungen durchgeführt und von Forschern analysiert, die für die Identität der Verbindung geblendet waren.

Phylogenetische Analyse

Die phylogenetische Analyse von humanen HTR2- und Zebrafisch-Htr2-Proteinsequenzen wurde mit der PhyML-Software unter den SH-like Likelihood-Ratio-Testparametern (http://www.phylogeny.fr/) durchgeführt (Dereeper et al., 2008). Proteinsequenzen wurden von Ensembl human HTR2A (ENST00000542664), HTR2B (ENST00000258400), HTR2C (ENST00000276198) und Zebrafisch htr2aa (ENSDART00000141502), htr2ab (ENSDART00000150982), htr2b ( ENSDART00000104569), htr2cl1 (ENSDART00000024191) Sequenzen.

Quantitative Echtzeit-mRNA-Expressionsanalyse

Die Expressionsniveaus von Zebrafisch-htr2-Genen wurden unter Verwendung von RNA untersucht, die aus 25 Köpfen oder Schwänzen von 5 dpf-Wildtyp- oder scn1Lab-homozygoten mutierten Larven und sezierten Gehirnen von einzelnen Wildtyp-erwachsenen männlichen Zebrafischen gepoolt wurde. Die Gesamt-RNA wurde mit dem TRIzol®-Reagenz (Invitrogen) gemäß dem Herstellerprotokoll extrahiert und mit DNase I (Invitrogen) behandelt. Gereinigte mRNA wurde unter Verwendung des SuperScript®III-Erststrangsynthesesystems (Invitrogen) mit einer Mischung aus Oligo (dT) 20 in cDNA retrotranskribiert. Die Expressionsniveaus der Zebrafisch-htr2-Gene und des Housekeeping-Gens eukaryotic translation elongation factor 1 alpha 1, like 1 (eef1a1l1) wurden mit einer StepOne ™ Real-Time PCR-Maschine (Applied Biosystems) bestimmt. Die Reaktionen wurden in 20 µl Volumen auf 96-well Platten mit SYBR®Green Master Mix (Applied Biosystems), mit 250 nM Primer und 3 µl cDNA durchgeführt. Oligonukleotidsequenzen sind in ergänzender Tabelle 2 aufgeführt. Die Daten wurden aus drei unabhängigen Experimenten analysiert. Die Daten wurden als Ct-Werte ausgedrückt und zur Bestimmung von ΔCt-Werten verwendet.

Humanstudien

Nach erfolgreicher Identifizierung von Verbindungen in unserem Zebrafischmodell und Berücksichtigung der Pharmakokinetik wurde Kindern Belviq® (Lorcaserin) im Rahmen eines Compassionate-Use-Protokolls im Children’s Hospital Colorado (IND 125307) verschrieben. Kinder, die für die Anwendung von Belviq® qualifiziert waren, wenn sie eine SCN1A-Mutation oder eine klinische Diagnose des Dravet-Syndroms hatten und mindestens zwei Medikamente, einschließlich Stiripentol in einigen Fällen und ohne Natriumkanalblocker, versagten. Kinder mussten zu Studienbeginn und alle 6 Monate während der Anwendung des Produkts ein Elektrokardiogramm und ein Echokardiogramm erhalten. Darüber hinaus mussten sie alle 3 Monate Nachuntersuchungen durchführen, um ein angemessenes Wachstum sicherzustellen und auf zusätzliche Nebenwirkungen zu prüfen. Labortests waren alle 6 Monate erforderlich, um hämatologische Tests, Leberfunktionstests und Nierenfunktionstests einzuschließen. Die Belviq®-Dosis wurde mit 2, 5 mg vor dem Schlafengehen begonnen und bei Bedarf wöchentlich schrittweise auf eine Höchstdosis von 10 mg zweimal täglich oder 0, 3 mg / kg / Tag erhöht — je nachdem, was zuerst auftrat.

Die Genehmigung des Institutional Review Board für die retrospektive Datenerhebung einschließlich eines Verzichts auf die Zustimmung wurde eingeholt. Die Daten wurden aus einer retrospektiven Überprüfung der elektronischen Krankenakten im Children’s Hospital Colorado extrahiert, einschließlich Alter, Anfallsarten und Häufigkeit vor und nach der Anwendung von Belviq®, Nebenwirkungen, Dosis von Belviq® und gleichzeitige Einnahme von Medikamenten.

Statistische Analyse

Die Daten werden als Mittelwert ± Standardfehler des Mittelwerts (SEM) dargestellt, sofern nicht anders angegeben. Zum Vergleich zwischen zwei Gruppen Student T-Test wurden verwendet. Wenn die Varianz keine Normalverteilung hatte, wurde der nichtparametrische Mann-Whitney-U-Test verwendet. Einweg-ANOVA nach Dunnetts Mehrfachvergleichstest zur Analyse gegen eine Kontrollprobe oder Holm-Sidak paarweise Mehrfachvergleiche zwischen Mittelwerten. Unterschiede, die als statistisch signifikant angesehen werden, sind mit Sternchen gekennzeichnet (*P < 0,05; **P < 0,01).

Ergebnisse

Wirkung von Clemizol auf das Anfallsverhalten bei Zebrafischen

Wir behandelten scn1Lab-mutierte Larven (5 dpf) mit Clemizol in Konzentrationen zwischen 30 und 400 µM und überwachten dann die Wirkung auf das spontane Anfallsverhalten mithilfe einer automatisierten Bewegungsverfolgungssoftware. Basierend auf 250 wiederholten Bewegungskontrollstudien mit unbehandelten scn1Lab-Mutanten wurde eine Verringerung der mittleren Schwimmgeschwindigkeit ≥40% (> 1,5 × SD) gegenüber dem Ausgangswert als Schwelle für eine positive Unterdrückung des Anfallsverhaltens festgelegt. Clemizol (Abb. 1A) zeigten bei 300 und 400 µM (30-min-Exposition) und bei 100 µM (90-min-Exposition) antiepileptische Aktivität (Abb. 1B); Längere Expositionen waren bei den höheren Konzentrationen toxisch. Um festzustellen, ob Clemizol das spontane Anfallsverhalten bei einer zweiten Zebrafisch-scn1-Mutante unterdrücken kann, untersuchten wir mutierte scn1Laa-Larven (5 dpf) im Locomotion Tracking Assay. Larven, die als Anfallsverhalten im Stadium III identifiziert wurden (z. B. Ganzkörperkrämpfe, schnelle Schwimmaktivität und kurzer Verlust der Körperhaltung; Abb. 1C) wurden in nachfolgenden Feldaufnahmen aus dem Vorderhirn als elektrographische Entladungen mit interiktalen und iktalen Anteilen bestätigt (Abb. 1D). Die mittlere Schwimmgeschwindigkeit für Larven, die als S3- oder ‚mutmaßliche scn1Laa-Mutanten‘ -Zebrafisch identifiziert wurden, war signifikant höher als für Geschwisterkontrollen oder alle getesteten Larven (Abb. 1E); Mutanten wurden als SCN1LAA-Homozygoten durch Post-hoc-PCR bestätigt. Wir testeten dann Medikamente, von denen zuvor gezeigt wurde, dass sie spontane Anfälle beim Dravet-Syndrom unterdrücken, und scn1Lab-Mutanten (250 µM Stiripentol und 250 µM Diazepam) sowie 250 µM Lamotrigin (ein AED, das Anfälle beim Dravet-Syndrom verschlimmern kann). Erwartungsgemäß unterdrückten Stiripentol und Diazepam, jedoch nicht Lamotrigin, das Anfallsverhalten bei scn1Laa-mutierten Larven signifikant; 250 µM Clemizol war auch in diesem Assay wirksam (Abb. 1F). Zusammen zeigen diese Studien, dass Clemizol das Anfallsverhalten in zwei verschiedenen scn1-mutierten Zebrafischlinien unterdrücken kann.

Untersuchung des Wirkmechanismus von Clemizol

Da Antihistaminika bekanntermaßen Kinderepilepsien verschlimmern und Zebrafisch H1 eine schlechte Homologie mit dem Menschen zeigt (Peitsaro et al., 2007) stellten wir die Hypothese auf, dass Clemizol über einen antihistaminergen Wirkmechanismus keine antiepileptische Aktivität ausübt. Um diese Hypothese zu testen, durchsuchten wir unsere Datenbank nach allen Verbindungen mit anti-histimanergen Eigenschaften. Neunundvierzig Medikamente aus unserer Screening-Datenbank mit über 2300 Verbindungen wurden identifiziert. None of these were effective in suppressing scn1Lab mutant seizure behaviour in the locomotion assay. Several increased locomotor activity (thioperamide, A4730, mepyramine maleate, R-methylhistamine, mebhydrolin napthalenesulphonate, clemastine fumarate, azatadine dimaleate, chlorpheniramine maleate, and clemastine fumarate) or were found to be toxic (chlorpheniramine maleate, cinnarazine, promethazine hydrochloride, desloratadine, hydroxyzine, and cyclizine) (Supplementary Fig. 1). Als nächstes wurde ein Radioligandenbindungstest an 132 Targets durchgeführt, einschließlich verschiedener Rezeptoren, Ionenkanäle, Transporter, Enzyme und Second Messenger (Abb. 2 und ergänzend Fig. 2). Clemizol hat erwartungsgemäß eine sehr hohe Antagonisten-Bindungsaffinität für den H1-Rezeptor (99%). Die nächsthöchste Affinität als Agonist war für zwei postsynaptische 5-HT-Rezeptor-Untereinheiten, HTR2A (86%) und HTR2B (83%). Andere positiv identifizierte Ziele mit prozentualen Hemmwerten zwischen 50 und 78% umfassten Ionenkanalmodulatoren und andere G-Protein-gekoppelte Rezeptoren (GPCR).

Abbildung 2

Radioligandenbindungsassay zur Identifizierung von Bindungszielen von Clemizol. Clemizol wurde einem Radioligandenbindungstest gegen 132 Targets unterzogen. Die funktionelle Agonistenaktivität von Clemizol gegen 67 Ziele wird gezeigt. Die Verbindung Bindung wurde berechnet als% Hemmung der Bindung eines radioaktiv markierten Liganden spezifisch für jedes Ziel. Hemmung oder Stimulation höher als 50% und sind gelb dargestellt und gelten als signifikante Wirkungen von Clemizol.

Abbildung 2

Radioligandenbindungsassay zur Identifizierung von Bindungszielen von Clemizol. Clemizol wurde einem Radioligandenbindungstest gegen 132 Targets unterzogen. Die funktionelle Agonistenaktivität von Clemizol gegen 67 Ziele wird gezeigt. Die Verbindung Bindung wurde berechnet als% Hemmung der Bindung eines radioaktiv markierten Liganden spezifisch für jedes Ziel. Hemmung oder Stimulation höher als 50% und sind gelb dargestellt und gelten als signifikante Wirkungen von Clemizol.

Um festzustellen, ob Medikamente, die Ionenkanäle, GPCRs oder 5-HT-Signale modulieren, die anfallsunterdrückende Aktivität von Clemizol in scn1Lab-mutierten Larven rekapitulieren können, erhielten wir kommerziell erhältliche Wirkstoffbibliotheken, die diese drei Kategorien umfassen. Im verblindeten Phänotyp-basierten Screening testeten wir Verbindungen auf ihre Fähigkeit, die mittlere Schwimmgeschwindigkeit von 5 dpf scn1Lab-Mutanten bei einer Konzentration von 250 µM (n = 6 Fische pro Medikament) zu reduzieren. Diagramme für den First-Pass-Assay für alle 368 Verbindungen sind in Abb. 3A-C. Verbindungen, die die Bewegung (gemessen als Änderung der mittleren Geschwindigkeit) um ≥40% verringerten, wurden als signifikant angesehen. Fünf Verbindungen aus der Ionenkanal-Ligandenbibliothek (9,6%), 27 aus der GPCR-Verbindungsbibliothek (10,6%) und 10 aus der 5-HT-Verbindungsbibliothek (16,1%) wurden als positive Treffer identifiziert. Der anschließende erneute Test dieser Verbindungen wurde an einer separaten Kupplung von scn1Lab-Mutanten bei 250 µM durchgeführt; Weitere fünf Borderline-Verbindungen aus der 5-HT-Bibliothek wurden ebenfalls erneut getestet. AEDs (Natriumvalproat und Carbamazepin), die zuvor bei scn1Lab-Larven untersucht wurden (Baraban et al., 2013) wurden für weitere Tests nicht berücksichtigt (Abb. 4). Von den erneut getesteten Verbindungen wurde bestätigt, dass eine aus der Ionenkanalbibliothek, sechs aus der GPCR-Verbindungsbibliothek und zwei aus der 5-HT-Verbindungsbibliothek die Geschwindigkeit verringern. Als nächstes wurden alle identifizierten Verbindungen unblindet und von kommerziellen Lieferanten für einen dritten Verhaltensassay-Bildschirm bei 250 µM bezogen. TCB-2 wurde auch aufgrund seiner berichteten Identifizierung bei abnehmender epileptiformer Aktivität weiter charakterisiert (Sourbron et al., 2016). In den drei Bibliotheken wurden 100 Verbindungen (27,1%) als ‚toxisch‘ und 53 Verbindungen (14.4%) wurden als ‚übererregend‘ eingestuft, d.h. führten zu einer erhöhten Schwimmgeschwindigkeit (ergänzende Tabelle 1). Positive Treffer, die in drei unabhängigen Locomotion-Assays nicht toxisch waren, gingen zu einem sekundären elektrophysiologischen Assay über.

Abbildung 3

Zusammenfassung des Behavioural Locomotion Library Screenings mit scn1Lab-mutierten Zebrafischlarven. Diagramme des lokomotorischen Anfallsverhaltens für 5 dpf scn1Lab-Mutanten, die gegen (A) 52 Ionenkanalliganden, (B) 254 GPCR-Liganden und (C) 65 5-HT-modulierende Verbindungen gescreent wurden. Die Schwelle zur Hemmung der Anfallsaktivität (positive Treffer) wurde als Verringerung der mittleren Schwimmgeschwindigkeit von ≥40% (rote Linie) bestimmt. Blaue Datenpunkte stellen Verbindungen dar, die als toxisch eingestuft wurden, da behandelte Larven nach 90-minütiger Exposition keinen sichtbaren Herzschlag oder keine Bewegung als Reaktion auf Berührung aufweisen.

Abbildung 3

Zusammenfassung des Behavioural Locomotion Library Screenings mit scn1Lab-mutierten Zebrafischlarven. Diagramme des lokomotorischen Anfallsverhaltens für 5 dpf scn1Lab-Mutanten, die gegen (A) 52 Ionenkanalliganden, (B) 254 GPCR-Liganden und (C) 65 5-HT-modulierende Verbindungen gescreent wurden. Die Schwelle zur Hemmung der Anfallsaktivität (positive Treffer) wurde als Verringerung der mittleren Schwimmgeschwindigkeit von ≥40% (rote Linie) bestimmt. Blaue Datenpunkte stellen Verbindungen dar, die als toxisch eingestuft wurden, da behandelte Larven nach 90-minütiger Exposition keinen sichtbaren Herzschlag oder keine Bewegung als Reaktion auf Berührung aufweisen.

Abbildung 4

Heatmap positiver Verbindungen, die aus den drei Zielbibliotheken identifiziert wurden. Die prozentuale Geschwindigkeitsänderung wird für sechs einzelne Larven aus dem ersten Durchlaufversuch (1-6) gezeigt. Die mittleren Geschwindigkeitsdaten von sechs Fischen werden für Versuch eins und Versuch zwei angezeigt. Arzneimittel, die die mittlere Schwimmgeschwindigkeit über dem Schwellenwert reduzierten und in der dritten Studie unter Verwendung einer separat bezogenen Verbindung nicht toxisch waren, sind fett hervorgehoben. Diese positiven Verbindungen wurden für zusätzliche Tests in Betracht gezogen. Beachten: Lorcaserin wurde sowohl in der GPCR- als auch in der 5-HT-Bibliothek positiv identifiziert, so dass es auch für weitere Tests in Betracht gezogen wurde.

Abbildung 4

Heatmap positiver Verbindungen, die aus den drei Zielbibliotheken identifiziert wurden. Die prozentuale Geschwindigkeitsänderung wird für sechs einzelne Larven aus dem ersten Durchlaufversuch (1-6) gezeigt. Die mittleren Geschwindigkeitsdaten von sechs Fischen werden für Versuch eins und Versuch zwei angezeigt. Arzneimittel, die die mittlere Schwimmgeschwindigkeit über dem Schwellenwert reduzierten und in der dritten Studie unter Verwendung einer separat bezogenen Verbindung nicht toxisch waren, sind fett hervorgehoben. Diese positiven Verbindungen wurden für zusätzliche Tests in Betracht gezogen. Hinweis: Lorcaserin wurde sowohl in der GPCR- als auch in der 5-HT-Bibliothek positiv identifiziert, sodass es auch für weitere Tests in Betracht gezogen wurde.

Secondary drug screen using scn1Lab mutants

Die Überwachung der elektrographischen Gehirnaktivität ist ein ‚Goldstandard‘ auf dem Gebiet der Epilepsie und kann erreicht werden, indem eine Mikroelektrode in eine visuell identifizierte Gehirnregion eines Agar-immobilisierten Zebrafisches eingebracht wird. Bei 5 dpf zeigen lokale Feldpotentialaufnahmen von scn1Lab-Zebrafischlarven durchschnittlich 20 abnormale elektrographische Anfallsereignisse während einer 10-minütigen Epoche mit einer durchschnittlichen Dauer von etwa 500 ms. scn1Lab-Zebrafischlarven wurden mit Verbindungen behandelt, von denen zunächst bestätigt wurde, dass sie das Fortbewegungsverhalten unterdrücken, und dann einer lokalen Feldpotentialüberwachung unterzogen. Trazodon, Lorcaserin und Detomidin unterdrückten die Häufigkeit dieser elektrographischen Anfallsereignisse (Abb. 5A). Lorcaserin und Trazodon erhöhten auch die Dauer dieser elektrographischen Anfallsereignisse, obwohl in diesen Experimenten epileptische Ereignisse selten waren (Abb. 5B und C). Repräsentative EEG-Aufzeichnungsepochen sind in Fig. 5C; MK-801 und TCB-2 erhöhten die Häufigkeit elektrographischer Anfallsereignisse. Pancuronium (nikotinischer Acetylcholinrezeptorantagonist, Lähmungsmittel), Tetracain (Lokalanästhetikum), Lidocain (Natriumkanalblockeranästhetikum), Loperamid (peripherer Opioidrezeptoragonist) und Rotundin (D1-Rezeptorantagonist) wurden als falsch positiv eingestuft, da sie die elektrographische Anfallsaktivität nicht unterdrücken konnten.

Abbildung 5

Elektrophysiologischer Assay zur Identifizierung von Medikamenten, die den scn1Lab-mutierten Epilepsie-Phänotyp retten. Balkendiagramme, die die (A) Anzahl und (B) Dauer epileptiformer Ereignisse in einer 10-minütigen Aufzeichnungsperiode für scn1Lab-Larven zeigen, die Lorcaserin (n = 8), Trazodon (n = 10), MK-801 (n = 4), TCB-2 (n = 9), Pancuronium (n = 8), Tetracain (n = 4), Lidocain (n = 6), Loperamid (n = 8), Detomidin (n = 5), Rotundin (n = 4) oder scn1Lab-Mutanten (n = 20). Graph darstellen bedeuten ± SEM. Der ungepaarte T-Test des Schülers oder der Mann-Whitney-Rangsummentest wurden verwendet * P < 0,05. (C) Es werden repräsentative Feldelektroden-Aufzeichnungsepochen (10 min) für vier Verbindungen mit signifikanten Änderungen der Ereignishäufigkeit im Vergleich zu unbehandeltem scn1Lab-mutiertem Zebrafisch (rot) gezeigt. Aufzeichnungen wurden mit einer Elektrode im Vorderhirn von Agar-immobilisierten scn1Lab-Larven erhalten, die zuvor im Locomotion-Assay ein unterdrücktes anfallsähnliches Verhalten gezeigt hatten.

Abbildung 5

Elektrophysiologischer Assay zur Identifizierung von Medikamenten, die den scn1Lab-mutierten Epilepsie-Phänotyp retten. Balkendiagramme, die die (A) Anzahl und (B) Dauer epileptiformer Ereignisse in einer 10-minütigen Aufzeichnungsperiode für scn1Lab-Larven zeigen, die Lorcaserin (n = 8), Trazodon (n = 10), MK-801 (n = 4), TCB-2 (n = 9), Pancuronium (n = 8), Tetracain (n = 4), Lidocain (n = 6), Loperamid (n = 8), Detomidin (n = 5), Rotundin (n = 4) oder scn1Lab-Mutanten (n = 20). Graph darstellen bedeuten ± SEM. Der ungepaarte T-Test des Schülers oder der Mann-Whitney-Rangsummentest wurden verwendet * P < 0,05. (C) Es werden repräsentative Feldelektroden-Aufzeichnungsepochen (10 min) für vier Verbindungen mit signifikanten Änderungen der Ereignishäufigkeit im Vergleich zu unbehandeltem scn1Lab-mutiertem Zebrafisch (rot) gezeigt. Aufzeichnungen wurden mit einer Elektrode im Vorderhirn von Agar-immobilisierten scn1Lab-Larven erhalten, die zuvor im Locomotion-Assay ein unterdrücktes anfallsähnliches Verhalten gezeigt hatten.

Tertiäres Screening zur Identifizierung vielversprechender Leitverbindungen für die Klinik

Trazodon und Lorcaserin, zwei von der FDA zugelassene Verbindungen mit dem Potenzial für eine Off-Label-Anwendung beim Dravet-Syndrom, wurden über einen Konzentrationsbereich (10-750 µM) zu zwei Zeitpunkten (30 und 90 min) im Locomotion Assay untersucht. Detomidin, ein Beruhigungsmittel für Pferde mit geringem Translationspotential, wurde nicht weiter untersucht. Trazodon war konzentrationsabhängig wirksam und erreichte eine maximale Wirksamkeit von ∼80% Reduktion bei 250 µM (90 min) und 500 µM (30 min). Toxizität wurde bei 750 µM beobachtet (Abb. 6A). Lorcaserin hatte eine maximale Wirksamkeit von ∼50% Geschwindigkeitsreduzierung bei 10 µM (90 min). Diese Unterdrückung des Anfallsverhaltens wurde bei 100 und 250 µM (90 min) aufrechterhalten und eine Toxizität oberhalb von 500 µM beobachtet (Abb. 6B); 30 min Exposition war nur bei einer Konzentration von 500 µM wirksam. Trazodon und Lorcaserin gingen zu einem zusätzlichen Sicherheits-Wirksamkeitstest über, der eine Auswaschphase in unserem mikrofluidischen Überwachungssystem Integrated Zebrafish Activity Platform (iZAP) (Hong et al., 2016). Hier werden scn1Lab-mutierte Larven in Aufnahmekanälen gefangen und mit integrierten Oberflächenelektroden nichtinvasiv überwacht. Baseline-Anfallsaktivität wurde für Mutanten gleichzeitig festgestellt, dann 250 µM Trazodon oder Lorcaserin wurde in die mikrofluidischen Kammern perfundiert. Trazodon reduzierte die Anfallsaktivität um 89,0 ± 9,1% (n = 5), und die Behandlung mit Lorcaserin zeigte 27.2 ± 15,7% Suppression (n = 5) während der 2-stündigen Behandlungsperiode. Die Aktivität kehrte während einer nachfolgenden Auswaschperiode auf das Ausgangsniveau zurück (Abb. 7). Mutierte Larven wurden dann aus dem iZAP-System freigesetzt und als gesund und frei schwimmend beobachtet. Als Kontrollexperiment wurden ähnliche Studien mit einer Exposition von 250 µM Ethosuximid durchgeführt – einem AED, das bei der Unterdrückung von Anfällen im Zusammenhang mit dem Dravet-Syndrom nicht wirksam ist. Es wurde keine Unterdrückung der elektrographischen Anfallsaktivität festgestellt (4,5 ± 3,2 % Zunahme; n = 6 scn1Lab-Mutanten; Ergänzende Abb. 3).

Abbildung 6

Dosis-Wirkungs-Bewertung mutmaßlicher Antiepileptika bei scn1Lab-mutierten Zebrafischen. Mutmaßliche Antiepileptika Trazodon und Lorcaserin wurden auf Wirksamkeit bei 5 dpf scn1Lab-mutierten Zebrafischen getestet. Chemische Struktur für jede Verbindung ist gezeigt (A und B). Diagramme zeigen die Änderung der mittleren Geschwindigkeit über fünf Konzentrationen von (C) Trazodon und (D) Lorcaserin. Die Fortbewegung wurde nach einer Belichtung von 30 min (blaue Balken) und 90 min (gelbe Balken) für 10 min aufgezeichnet. Die Toxizität wird durch gestrichelte Balken angezeigt. Jeder Balken repräsentiert die mittlere Geschwindigkeitsänderung ± SEM aus drei unabhängigen Experimenten. Der Schwellenwert für eine Geschwindigkeitsabnahme liegt bei ≥ 40% (rote Linie). Repräsentative Tracking-Plots werden aus einem einzigen Experiment mit sechs einzelnen 5 dpf scn1Lab-Zebrafischen zu Studienbeginn und nach einer 30-minütigen und 90-minütigen Exposition von 250 µM (E) Trazodon oder (F) Lorcaserin gezeigt. Die Gesamtbewegung wird für eine 10-minütige Aufnahmeepoche angezeigt.

Abbildung 6

Dosis-Wirkungs-Bewertung mutmaßlicher Antiepileptika bei scn1Lab-mutierten Zebrafischen. Mutmaßliche Antiepileptika Trazodon und Lorcaserin wurden auf Wirksamkeit bei 5 dpf scn1Lab-mutierten Zebrafischen getestet. Chemische Struktur für jede Verbindung ist gezeigt (A und B). Diagramme zeigen die Änderung der mittleren Geschwindigkeit über fünf Konzentrationen von (C) Trazodon und (D) Lorcaserin. Die Fortbewegung wurde nach einer Belichtung von 30 min (blaue Balken) und 90 min (gelbe Balken) für 10 min aufgezeichnet. Die Toxizität wird durch gestrichelte Balken angezeigt. Jeder Balken repräsentiert die mittlere Geschwindigkeitsänderung ± SEM aus drei unabhängigen Experimenten. Der Schwellenwert für eine Geschwindigkeitsabnahme liegt bei ≥ 40% (rote Linie). Repräsentative Tracking-Plots werden aus einem einzigen Experiment mit sechs einzelnen 5 dpf scn1Lab-Zebrafischen zu Studienbeginn und nach einer 30-minütigen und 90-minütigen Exposition von 250 µM (E) Trazodon oder (F) Lorcaserin gezeigt. Die Gesamtbewegung wird für eine 10-minütige Aufnahmeepoche angezeigt.

Abbildung 7

iZAP-EEG-Messungen von scn1Lab während der Behandlung und Auswaschen mit Trazodon und Lorcaserin. (A) Zeitbereichsdiagramme und (B) Frequenzbereichsdiagramme eines repräsentativen Feldpotentials, gemessen an einer 5 dpf scn1Lab-Mutante, die mit 250 µM Trazodon behandelt wurde. Das Inset-Foto zeigt die Larve unterhalb der integrierten Oberflächenelektroden des iZAP, der Referenzelektrode und des Fangkanals. (C) Repräsentative gezoomte Feldpotentialdiagramme von Baseline, Trazodon und Waschphase. Die gleichen Daten sind für eine repräsentative individuelle scn1Lab-mutierte Larve gezeigt, die mit 250 µM Lorcaserin behandelt wurde. Während des 2-stündigen Behandlungsfensters zeigte sich ein Trend zu einer verminderten Wirksamkeit bei längerer Lorcaserin–Exposition (D-F).

Abbildung 7

iZAP-EEG-Messungen von scn1Lab während der Behandlung und Auswaschen mit Trazodon und Lorcaserin. (A) Zeitbereichsdiagramme und (B) Frequenzbereichsdiagramme eines repräsentativen Feldpotentials, gemessen an einer 5 dpf scn1Lab-Mutante, die mit 250 µM Trazodon behandelt wurde. Das Inset-Foto zeigt die Larve unterhalb der integrierten Oberflächenelektroden des iZAP, der Referenzelektrode und des Fangkanals. (C) Repräsentative gezoomte Feldpotentialdiagramme von Baseline, Trazodon und Waschphase. Die gleichen Daten sind für eine repräsentative individuelle scn1Lab-mutierte Larve gezeigt, die mit 250 µM Lorcaserin behandelt wurde. Während des 2-stündigen Behandlungsfensters zeigte sich ein Trend zu einer verminderten Wirksamkeit bei längerer Lorcaserin–Exposition (D-F).

5- HT-Rezeptorexpression in Zebrafischlarven

Da Clemizol eine signifikante Bindungsaffinität zu HTR2A und HTR2B aufweist und sowohl Trazodon als auch Lorcaserin 5-HT-Signalmodulatoren sind, wollten wir die Expression dieser Rezeptoren in Zebrafischen bestätigen. Die Proteinsequenzausrichtung von menschlichen und Zebrafisch-HTR2-Rezeptoren ergab eine evolutionäre Konservierung mit Zebrafisch-Orthologen, wobei Htr2aa und Htr2ab beide 59,3% Proteinidentität mit dem menschlichen HTR2A aufweisen; und ein einzelner HTR2B-Ortholog, Htr2b, der 62,0% Proteinidentität zeigt. Die Quantifizierung des htr2-Expressionsniveaus unter Verwendung isolierter Köpfe oder Schwänze von 5 dpf-Wildtyp- oder scn1Lab-mutierten Larven ergab eine angereicherte htr2a- und htr2cl1-Expression im Kopf. Ähnliche Ergebnisse wurden von adulten Wildtyp-Zebrafischhirnen erhalten, da mutierte Larven nicht bis zum Erwachsenenalter überleben (Ergänzende Abb. 4).

Verringerung der Anfallshäufigkeit bei Patienten mit Dravet-Syndrom

Das Dravet-Syndrom ist eine katastrophale Epilepsie und seltene Erkrankung im Kindesalter (http://www.rarediseases.org/) mit schwächenden Folgen, einschließlich hartnäckiger Epilepsie, stark eingeschränkter kognitiver Entwicklung und SUDEP-RISIKO. Unsere präklinischen Daten bestätigen, dass die Modulation der 5-HT-Signalisierung Anfälle unterdrücken kann, die mit SCN1A-Funktionsverlustmutationen assoziiert sind. Da identifizierte 5-HT-Modulatoren von der FDA zugelassene Verbindungen mit bekannten Sicherheitsprofilen sind, könnte die Behandlung mit diesen umgewidmeten Medikamenten die Anfallshäufigkeit bei Kindern mit Dravet-Syndrom verändern. Dieser translationale Ansatz zielt auf seltene und verheerende Krankheiten ab, für die keine groß angelegten klinischen Studien durchführbar sind (Dunoyer, 2011; Parker et al., 2013).

Da Clemizol derzeit nicht in klinischer Formulierung hergestellt oder erhältlich ist und Trazodon je nach Konzentration als 5-HT-Rezeptoragonist oder -Antagonist wirken kann (Maj et al., 1979; Marcoli et al., 1998), wählten wir Belviq® (Lorcaserin) unter einem Compassionate Use Off-Label-Programm in einer kleinen Population von Kindern mit Dravet-Syndrom zu bewerten. Diese Kinder erwiesen sich als resistent gegen mindestens fünf zugelassene AEDs. Fünf Kinder (Durchschnittsalter: 11,8 Jahre; Spanne: 7-18 Jahre) heterozygot für eine Deletion in SCN1A wurden prospektiv mit Belviq® behandelt und longitudinal im Children’s Hospital Colorado (Aurora, CO) verfolgt. Das Behandlungsprotokoll wurde vom Colorado Medical Institutional Review Board (COMIRB) genehmigt, und die Eltern von Patienten mit Dravet-Syndrom stimmten der Teilnahme ihres Kindes schriftlich zu. Wir überprüften retrospektiv die im Tagebuch gemeldete Anzahl atonischer, myoklonischer und generalisierter tonisch-klonischer (GTC) Anfälle, Nebenwirkungen und gleichzeitige AEDs.

Die klinischen Merkmale von Kindern mit Dravet-Syndrom, die mit Belviq® behandelt wurden, sind in Tabelle 1 zusammengefasst. Es gab keine Todesfälle unter den fünf mit Belviq® behandelten Patienten, und Belviq® wurde gut vertragen, ohne dass schwerwiegende unerwünschte Ereignisse zum Absetzen der Therapie führten. Während der Off-Label-Behandlung mit Belviq® war ein Patient zunächst 3 Wochen lang anfallsfrei, ein Patient 2 Wochen lang anfallsfrei und ein dritter Patient hatte 1-2 anfallsfreie Tage pro Woche. Alle fünf Patienten zeigten eine Verringerung der Gesamtzahl der Anfälle. Generalisierte tonisch-klonische Anfälle waren bei Patienten 1, 2 und 3 signifikant reduziert. In der Tat erlebte Patient 2 eine 90% ige Reduktion der generalisierten tonisch-klonischen Anfälle, ohne dass Rettungsmedikamente erforderlich waren. Zwei Patienten bleiben auf Belviq® ohne Zunahme der Anfallshäufigkeit und wie erwartet war die häufigste Nebenwirkung ein verminderter Appetit. Ein Patient nahm die Medikation ein zweites Mal mit vorübergehender Besserung für kurze Zeit wieder auf und verjüngte sich dann.

Tabelle 1

Mit Belviq® (Lorcaserin) behandelte Patienten mit Dravet-Syndrom zeigen eine verringerte Anfallshäufigkeit

Geduldig . 1 . 2 . 3 . 4 . 5 .
Alter (Jahre) 10 18 10 7 14
Gewicht (Kilogramm) 28 46 23 24 35
Dosis (mg/kg/Tag) 0.25 0.27 0.19 0.32 0.31
Prior treatments CLZ CZP KD LMT LVT PRM OXC RUF TPX VPA CBZ CBD CLZ CLB CZP FBM LMT LVT PRM PHB TPM VPA CC KD VNS ESM FBM LMT LVT MSM VPA VMP ZNM KD CZP ESM LVT LZP STP TPM ZNM KD CBZ FBM GBP LCM LMT LVT OXC PHB PRED RUF STP VNS VPM ZNM KD
Concurrent AEDs CLB STP VPA CZP STP ZNM KD TPM VPA BRO CBD CLB VPA CLB TPX VPA
Prior seizure frequency FS: 50/day MS: zahlreiche täglich MS: täglich AS: 12/h MS: konstant über den Tag
GTC-Cluster: 1 / Monat FS + GTC: 10/ Monat (erfordert Rettungsmedikamente) GTC-Anfälle: 100/ Monat (Cluster 7-10) FS: 3-5 / Woche GTC-Anfälle: 1-2/ Woche
NCS: 1/ Monat
Anfallshäufigkeit nach der Behandlung: erste 3 Monate Anfallsfrei erste 3 Wochen, Cluster von Anfällen dann wieder anfallsfrei für 2 Wochen Anfallsfrei für 2 Wochen GTC-Anfälle: 46 / Monat (GTC-Cluster von 1-3 Anfällen) 1-2 anfallsfreie Tage / Woche MS: anfänglich morgens reduziert, steigt dann am späten Nachmittag auf konstant an
Cluster von Anfällen einmal im Monat mit (FS, GTC) MS: gelegentlich MS: täglich AS oder FS: 3 / Monat GTC: 1-2/ Woche
FS + AGB: 1/Monat (keine Rettungsmedikamente) AGB: 1-2 /Tag
NCS: 1/ Monat
Anfallshäufigkeit nach der Behandlung: nach den ersten 3 Monaten Allmählicher Anstieg der Anfälle mit Rückkehr zur Ausgangsfrequenz MS: cluster 1-2 / Woche Die Anfälle nahmen allmählich auf 16 / Monat mit einigen anfallsfreien Nächten ab, dann nahmen die Anfälle auf den Ausgangswert zu Allmählicher Anstieg der Anfälle, anfallsfreie Tage stoppten 9 Monate nach der Behandlung Unverändert verjüngte sich Belviq® ohne Änderung der Anfallshäufigkeit
FS + AGB: 1-2/Monat und (keine Rettungsmedikamente erforderlich) Keine Zunahme des Anfalls, wenn das Medikament abgesetzt wird
Behandlungsdauer (Monate) 12 Monate, immer noch 12 Monate, immer noch 14 Monate 13 Monate 9 Monate
Neustart aufgrund erhöhter Anfälle 2 Monate lang behandelt, abgebrochen, um an einer anderen Medikamentenstudie teilzunehmen
Nebenwirkungen keine keine Erbrechen und verminderter Appetit Verminderter Appetit Verminderter Appetit
Geduldig . 1 . 2 . 3 . 4 . 5 .
Alter (Jahre) 10 18 10 7 14
Gewicht (Kilogramm) 28 46 23 24 35
Dosis (mg/kg/Tag) 0.25 0.27 0.19 0.32 0.31
Prior treatments CLZ CZP KD LMT LVT PRM OXC RUF TPX VPA CBZ CBD CLZ CLB CZP FBM LMT LVT PRM PHB TPM VPA CC KD VNS ESM FBM LMT LVT MSM VPA VMP ZNM KD CZP ESM LVT LZP STP TPM ZNM KD CBZ FBM GBP LCM LMT LVT OXC PHB PRED RUF STP VNS VPM ZNM KD
Concurrent AEDs CLB STP VPA CZP STP ZNM KD TPM VPA BRO CBD CLB VPA CLB TPX VPA
Prior seizure frequency FS: 50/day MS: zahlreiche täglich MS: täglich AS: 12/h MS: konstant über den Tag
GTC-Cluster: 1 / Monat FS + GTC: 10/ Monat (erfordert Rettungsmedikamente) GTC-Anfälle: 100/ Monat (Cluster 7-10) FS: 3-5 / Woche GTC-Anfälle: 1-2/ Woche
NCS: 1/ Monat
Anfallshäufigkeit nach der Behandlung: erste 3 Monate Anfallsfrei erste 3 Wochen, Cluster von Anfällen dann wieder anfallsfrei für 2 Wochen Anfallsfrei für 2 Wochen GTC-Anfälle: 46 / Monat (GTC-Cluster von 1-3 Anfällen) 1-2 anfallsfreie Tage / Woche MS: anfänglich morgens reduziert, steigt dann am späten Nachmittag auf konstant an
Cluster von Anfällen einmal im Monat mit (FS, GTC) MS: gelegentlich MS: täglich AS oder FS: 3 / Monat GTC: 1-2/ Woche
FS + AGB: 1/Monat (keine Rettungsmedikamente) AGB: 1-2 /Tag
NCS: 1/ Monat
Anfallshäufigkeit nach der Behandlung: nach den ersten 3 Monaten Allmählicher Anstieg der Anfälle mit Rückkehr zur Ausgangsfrequenz MS: cluster 1-2 / Woche Die Anfälle nahmen allmählich auf 16 / Monat mit einigen anfallsfreien Nächten ab, dann nahmen die Anfälle auf den Ausgangswert zu Allmählicher Anstieg der Anfälle, anfallsfreie Tage stoppten 9 Monate nach der Behandlung Unverändert verjüngte sich Belviq® ohne Änderung der Anfallshäufigkeit
FS + AGB: 1-2/Monat und (keine Rettungsmedikamente erforderlich) Keine Zunahme des Anfalls, wenn das Medikament abgesetzt wird
Behandlungsdauer (Monate) 12 Monate, immer noch 12 Monate, immer noch 14 Monate 13 Monate 9 Monate
Neustart aufgrund erhöhter Anfälle 2 Monate lang behandelt, abgebrochen, um an einer anderen Medikamentenstudie teilzunehmen
Nebenwirkungen keine none Vomiting and decreased appetite Decreased appetite Decreased appetite

AS = atonic seizures; BRO = bromides; CBD = cannabidiol; CBZ = carbamazepine; CLB = clobazam; CZP = clonazepam; CLZ = clorazepate; CC = corpus callosotomy; ESM = ethosuximide; FBM = felbamate; FS = focal seizures; GBP = gabapentin; GTC = generalized tonic clonic seizures; KD = ketongenic diet; LCM = lacosamide; LMT = lamotrigine; LVT = levitiracetam; LZP = lorazepam; MS = myoclonic seizures; MSM = methosuximide; NCS = non-convulsive status; OXC = oxcarbazipine; PHB = phenobarbital; PRM = primodone; PRED = predinisone; RFM = rufinamide; STP = stiripentol; TPM = topiramate; VPA = valproic acid; VNS = vagus nerve stimulator; VPM = verapamil; ZNM = zonisamide.

Table 1

Dravet Syndrome patients treated with Belviq® (lorcaserin) show reduced seizure frequency

Patient . 1 . 2 . 3 . 4 . 5 .
Alter (Jahre) 10 18 10 7 14
Gewicht (Kilogramm) 28 46 23 24 35
Dosis (mg/kg/Tag) 0.25 0.27 0.19 0.32 0.31
Prior treatments CLZ CZP KD LMT LVT PRM OXC RUF TPX VPA CBZ CBD CLZ CLB CZP FBM LMT LVT PRM PHB TPM VPA CC KD VNS ESM FBM LMT LVT MSM VPA VMP ZNM KD CZP ESM LVT LZP STP TPM ZNM KD CBZ FBM GBP LCM LMT LVT OXC PHB PRED RUF STP VNS VPM ZNM KD
Concurrent AEDs CLB STP VPA CZP STP ZNM KD TPM VPA BRO CBD CLB VPA CLB TPX VPA
Prior seizure frequency FS: 50/day MS: zahlreiche täglich MS: täglich AS: 12/h MS: konstant über den Tag
GTC-Cluster: 1 / Monat FS + GTC: 10/ Monat (erfordert Rettungsmedikamente) GTC-Anfälle: 100/ Monat (Cluster 7-10) FS: 3-5 / Woche GTC-Anfälle: 1-2/ Woche
NCS: 1/ Monat
Anfallshäufigkeit nach der Behandlung: erste 3 Monate Anfallsfrei erste 3 Wochen, Cluster von Anfällen dann wieder anfallsfrei für 2 Wochen Anfallsfrei für 2 Wochen GTC-Anfälle: 46 / Monat (GTC-Cluster von 1-3 Anfällen) 1-2 anfallsfreie Tage / Woche MS: anfänglich morgens reduziert, steigt dann am späten Nachmittag auf konstant an
Cluster von Anfällen einmal im Monat mit (FS, GTC) MS: gelegentlich MS: täglich AS oder FS: 3 / Monat GTC: 1-2/ Woche
FS + AGB: 1/Monat (keine Rettungsmedikamente) AGB: 1-2 /Tag
NCS: 1/ Monat
Anfallshäufigkeit nach der Behandlung: nach den ersten 3 Monaten Allmählicher Anstieg der Anfälle mit Rückkehr zur Ausgangsfrequenz MS: cluster 1-2 / Woche Die Anfälle nahmen allmählich auf 16 / Monat mit einigen anfallsfreien Nächten ab, dann nahmen die Anfälle auf den Ausgangswert zu Allmählicher Anstieg der Anfälle, anfallsfreie Tage stoppten 9 Monate nach der Behandlung Unverändert verjüngte sich Belviq® ohne Änderung der Anfallshäufigkeit
FS + AGB: 1-2/Monat und (keine Rettungsmedikamente erforderlich) Keine Zunahme des Anfalls, wenn das Medikament abgesetzt wird
Behandlungsdauer (Monate) 12 Monate, immer noch 12 Monate, immer noch 14 Monate 13 Monate 9 Monate
Neustart aufgrund erhöhter Anfälle 2 Monate lang behandelt, abgebrochen, um an einer anderen Medikamentenstudie teilzunehmen
Nebenwirkungen keine keine Erbrechen und verminderter Appetit Verminderter Appetit Verminderter Appetit
Geduldig . 1 . 2 . 3 . 4 . 5 .
Alter (Jahre) 10 18 10 7 14
Gewicht (Kilogramm) 28 46 23 24 35
Dosis (mg/kg/Tag) 0.25 0.27 0.19 0.32 0.31
Prior treatments CLZ CZP KD LMT LVT PRM OXC RUF TPX VPA CBZ CBD CLZ CLB CZP FBM LMT LVT PRM PHB TPM VPA CC KD VNS ESM FBM LMT LVT MSM VPA VMP ZNM KD CZP ESM LVT LZP STP TPM ZNM KD CBZ FBM GBP LCM LMT LVT OXC PHB PRED RUF STP VNS VPM ZNM KD
Concurrent AEDs CLB STP VPA CZP STP ZNM KD TPM VPA BRO CBD CLB VPA CLB TPX VPA
Prior seizure frequency FS: 50/day MS: zahlreiche täglich MS: täglich AS: 12/h MS: konstant über den Tag
GTC-Cluster: 1 / Monat FS + GTC: 10/ Monat (erfordert Rettungsmedikamente) GTC-Anfälle: 100/ Monat (Cluster 7-10) FS: 3-5 / Woche GTC-Anfälle: 1-2/ Woche
NCS: 1/ Monat
Anfallshäufigkeit nach der Behandlung: erste 3 Monate Anfallsfrei erste 3 Wochen, Cluster von Anfällen dann wieder anfallsfrei für 2 Wochen Anfallsfrei für 2 Wochen GTC-Anfälle: 46 / Monat (GTC-Cluster von 1-3 Anfällen) 1-2 anfallsfreie Tage / Woche MS: anfänglich morgens reduziert, steigt dann am späten Nachmittag auf konstant an
Cluster von Anfällen einmal im Monat mit (FS, GTC) MS: gelegentlich MS: täglich AS oder FS: 3 / Monat GTC: 1-2/ Woche
FS + AGB: 1/Monat (keine Rettungsmedikamente) AGB: 1-2 /Tag
NCS: 1/ Monat
Anfallshäufigkeit nach der Behandlung: nach den ersten 3 Monaten Allmählicher Anstieg der Anfälle mit Rückkehr zur Ausgangsfrequenz MS: cluster 1-2 / Woche Die Anfälle nahmen allmählich auf 16 / Monat mit einigen anfallsfreien Nächten ab, dann nahmen die Anfälle auf den Ausgangswert zu Allmählicher Anstieg der Anfälle, anfallsfreie Tage stoppten 9 Monate nach der Behandlung Unverändert verjüngte sich Belviq® ohne Änderung der Anfallshäufigkeit
FS + AGB: 1-2/Monat und (keine Rettungsmedikamente erforderlich) Keine Zunahme des Anfalls, wenn das Medikament abgesetzt wird
Behandlungsdauer (Monate) 12 Monate, immer noch 12 Monate, immer noch 14 Monate 13 Monate 9 Monate
Neustart aufgrund erhöhter Anfälle 2 Monate lang behandelt, abgebrochen, um an einer anderen Medikamentenstudie teilzunehmen
Nebenwirkungen keine none Vomiting and decreased appetite Decreased appetite Decreased appetite

AS = atonic seizures; BRO = bromides; CBD = cannabidiol; CBZ = carbamazepine; CLB = clobazam; CZP = clonazepam; CLZ = clorazepate; CC = corpus callosotomy; ESM = ethosuximide; FBM = felbamate; FS = focal seizures; GBP = gabapentin; GTC = generalized tonic clonic seizures; KD = ketongenic diet; LCM = lacosamide; LMT = lamotrigine; LVT = levitiracetam; LZP = lorazepam; MS = myoclonic seizures; MSM = methosuximide; NCS = nicht-konvulsiver Status; OXC = Oxcarbazipin; PHB = Phenobarbital; PRM = Primodon; PRED = Predinison; RFM = Rufinamid; STP = Stiripentol; TPM = Topiramat; VPA = Valproinsäure; VNS = Vagusnervenstimulator; VPM = Verapamil; ZNM = Zonisamid.

Diskussion

Clemizol, ein Antihistaminikum der ersten Generation, das in den 1950er Jahren entdeckt wurde (Zierz et al., 1952), wurde als potenzielles Therapeutikum für die Behandlung des Dravet-Syndroms unter Verwendung von scn1Lab-mutierten Zebrafischen identifiziert, um repurposed drug Libraries zu screenen (Baraban et al., 2013; Dinday et al., 2015). Hier bestätigten wir eine antiepileptische Aktivität für Clemizol unter Verwendung eines zweiten scn1-Zebrafischmutantenmodells. Leider wird Clemizol bei Mäusen mit einer Plasmahalbwertszeit von < 10 min (im Vergleich zu 3,4 h beim Menschen) schnell metabolisiert (Nishimura et al., 2013), die ihre Bewertung in Mausmodellen einschränkt. Erfolgreich als Antihistaminikum eingesetzt (Zierz et al., 1952; Jacques et al., 1960) mit akuten und chronischen Studien, die von einer niedrigen Toxizität berichten (Finkelstein et al., 1960) wird Clemizol nicht mehr hergestellt und ist derzeit nicht für die Off-Label-klinische Verabreichung verfügbar. In Ermangelung eines Mittels zur effizienten Bewertung von Clemizol in präklinischen Nagetiermodellen verwendeten wir Zebrafische für die Zielbindung (5-HT-Rezeptoren) und die Identifizierung verwandter Arzneimittel (Trazodon und Lorcaserin) mit geeigneten Sicherheitsprofilen, die eine schnelle Übersetzung in eine klinische Anwendung ermöglichen. Compassionate Use, Off-Label-Verschreibung von Belviq® (Lorcaserin) an medizinisch hartnäckige Patienten mit Dravet-Syndrom wird ebenfalls beschrieben.

Antihistamin-H1-Rezeptor-Antagonisten sind in pädiatrischen Patientenpopulationen normalerweise kontraindiziert (Miyata et al., 2011) und das Screening dieser Medikamente bestätigten ihre Unfähigkeit, Anfälle bei scn1-Zebrafischen zu unterdrücken (und in einigen Fällen zu verschlimmern). Bindungsdaten deckten eine bisher unbekannte Clemizolaffinität für HTR2A- und / oder HTR2B-Rezeptoren auf. Ein nachfolgender phänotypischer Bildschirm von Zielbibliotheken identifizierte zwei 5-HT-modulierende Verbindungen, Trazodon und Lorcaserin, die in der Lage sind, verhaltens- und elektrophysiologische Anfälle auf eine mit Clemizol vergleichbare Weise zu unterdrücken. Belviq® (Lorcaserin) ist ein von der FDA zugelassener HTR2C-Agonist, der zur chronischen Gewichtskontrolle verschrieben wird (Thomsen et al., 2008). Desyrel® (Trazodon) ist auch ein von der FDA zugelassenes Antidepressivum, das häufig bei Schlafstörungen verschrieben wird (Mendelson, 2005). Es wird häufig als inverser HTR2A- und HTR2C-Antagonist und 5-HT-Aufnahmehemmer klassifiziert (Stahl, 2009). Studien an Ratten legen jedoch nahe, dass Trazodon oder sein Metabolit Meta-Chlorphenylpiperazin (mCPP) in höheren Konzentrationen als HTR2C-Agonist wirken kann (Maj et al., 1979; Marcoli et al., 1998). Insbesondere wurde zuvor gezeigt, dass eine chronische Trazodonbehandlung bei Mäusen vor elektrokrampfinduzierten Anfällen schützt (Chavan et al., 2010; Borowicz et al., 2012), Unterstützung unserer Daten von scn1Lab-mutierten Zebrafischen. Eine 5-HT-Rezeptor-vermittelte Wirkung für Clemizol steht auch im Einklang mit einem kürzlich durchgeführten phänotypischen Screening, bei dem Modulatoren der serotonergen Signalübertragung (einschließlich Clemizol) in einem präklinischen Modell der Machado-Joseph-Krankheit als wirksame Behandlung erwiesen wurden (Teixeira-Castro et al., 2015); und Studien hier legen nahe, dass Clemizol und Trazodon eine Weiterentwicklung für Off-Label-Tests bei Patienten mit Dravet-Syndrom rechtfertigen.

Unsere Ergebnisse tragen auch zu einer wachsenden Zahl von Beweisen bei, die auf eine Modulation der serotonergen Signalübertragung als potenten Suppressor der Anfallsaktivität hindeuten, insbesondere bei katastrophalen Epilepsien im Kindesalter wie dem Dravet-Syndrom. Kürzlich wurden 7 von 10 Patienten, die eine niedrig dosierte Behandlung mit dem 5-HT-Wiederaufnahmeblocker Fenfluramin erhielten, für 1 Jahr als anfallsfrei gemeldet (Ceulemans et al., 2016). Eine leichte Verdickung von einer oder zwei Herzklappen wurde bei zwei dieser Patienten berichtet, was mit einem möglichen Zusammenhang zwischen der Anwendung von Fenfluramin und pulmonaler Hypertonie übereinstimmt (Douglas et al., 1981; Ceulemans et al., 2016). Beim Menschen werden HTR2A und HTR2C im ZNS exprimiert, während die HTR2B-Expression im Herzen angereichert ist (Lambe et al., 2011; Meltzer et al., 2013). Genauer gesagt wird HTR2C auf einer Subpopulation von inhibitorischen Interneuronen exprimiert (Liu et al., 2007) und die Aktivierung dieser Rezeptoren mit 5-HT erhöht die GABA-vermittelte synaptische Hemmung (Boothman et al., 2006), d. H. Der antiepileptische Wirkmechanismus, der vielen häufig verschriebenen Antiepileptika zugrunde liegt. Tatsächlich legen die meisten präklinischen Studien nahe, dass die Aktivierung von HTR2A- und / oder HTR2C-Rezeptoren antiepileptische Wirkungen hat (Gharedaghi et al., 2014; Guiard et al., 2015), ein vernünftiger Wirkmechanismus, der Clemizol, Lorcaserin, Trazodon und den 5-HT-Wiederaufnahmeblocker Fenfluramin miteinander verbindet (Dinday et al., 2015; Ceulemans et al., 2016). Interessanterweise war die htr2b-Expression im Zebrafischhirn relativ gering, was darauf hindeutet, dass diese Medikamente möglicherweise eine antiepileptische Aktivität über die Aktivierung des HTR2A- oder HTR2C-Rezeptors ausüben. Interessanterweise haben Studien an Drosophila-Knock-in-Fliegen, die die menschliche Mutation K1270T SCN1A im Para-Natriumkanal-Gen tragen, gezeigt, dass die Supplementierung mit einem 5-HT-Vorläufer (5-Hydroxytryptophan) den hitzeinduzierten Anfallsphänotyp rettet (Schutte et al., 2014). Darüber hinaus bewertete eine kürzlich durchgeführte Studie mit scn1Lab-Mutanten 13 5-HT-Signalverbindungen und schlug auch eine mögliche antiepileptische Rolle für Modulatoren der 5-HT-Signalübertragung vor (Sourbron et al., 2016). Diese letzteren Zebrafischstudien verwendeten jedoch ein grundlegend anderes Protokoll (24 h versus 30-90 min Arzneimittelexposition), das zuvor nicht als erfolgreich validiert wurde Identifizierung von AEDs, die beim Dravet-Syndrom verwendet werden (Benzodiazepine, Valproat, Stiripentol, Bromide und ketogene Diät). Zusätzlich Wirkstoffkonzentrationen einige 10-fach niedriger als wir zeigen, wirksam zu sein in Zebrafisch (Baraban et al., 2005, 2013; Dinday et al., 2015) und berichten über eine antiepileptische Wirkung für das Halluzinogen TCB-2 (Abb. 5), legt nahe, dass der direkte Vergleich von Daten aus Laboratorien mit unterschiedlichen Verfahren mit Vorsicht interpretiert werden sollte.

Insgesamt kommen wir zu dem Schluss, dass mutierte Zebrafische ein geeignetes Modell für das schnelle Screening und die Entdeckung neuartiger AEDs sind, die mit geeigneten Sicherheitsprofilen die klinische Versorgung von Risikopatienten wie dem Dravet-Syndrom direkt beeinflussen können.

Abkürzungen

    Abkürzungen
  • 5- HT

    Serotonin

  • AED

    Antiepileptikum

  • dpf

    Tage nach der Befruchtung

  • GPCR

    G-Protein-gekoppelter Rezeptor

  • iZAP

    integrierte Zebrafisch-Analyseplattform

Danksagung

Wir möchten den Mitgliedern des Baraban-Labors, insbesondere Brian Grone und Matthew Dinday, für nützliche diskussionen im Laufe dieser Studien.

Finanzierung

S.C.B bestätigt die Finanzierung von NINDS R01 Grant No. NS079214, UCSF Catalyst Award und der Raymond & Beverley Sackler Centre Sabbatical Fund.

Ergänzungsmaterial

Ergänzungsmaterial ist bei Brain online verfügbar.

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