Resultados e Discussão
No dia da inoculação, o pH da estéril unbuffered batata dextrose agar (PCA) foi 5.63 enquanto o pH da estéril tamponada PDA variou de 3.51 para 9.35. Após quatro semanas de incubação à temperatura ambiente (25 °C), o pH do ágar estéril diminuiu (até 0,19) para o PDA tamponado, tamponado de Tris e tamponado de Tris-maleato e aumentou (até 0,24) para o PDA tamponado de citrato-fosfato e bicarbonato tamponado de carbonato (Quadro 1).
Quadro 1.Medições do pH de ágar esterilizado de dextrose da batateira.
Médio | Previstos pH do Tampão | Real pHa | |
---|---|---|---|
Estéril Agar | |||
Dia 0 | Dia 28 | ||
Unbuffered PDA | n/a | 5.63 | 5.47 |
Tris buffer PDA | 7.20 | 6.61 | 6.50 |
8.00 | 7.61 | 7.59 | |
9.00 | 8.24 | 8.19 | |
Citrato-fosfato tamponada PDA | 3.00 | 3.51 | 3.69 |
4.00 | 4.28 | 4.49 | |
5.00 | 5.17 | 5.40 | |
6.00 | 6.07 | 6.31 | |
7.00 | 7.01 | 7.23 | |
Carbonato-bicarbonato de buffer PDA | 9.20 | 9.07 | 9.13 |
10.00 | 9.25 | 9.26 | |
10.70 | 9.35 | 9.39 | |
Tris-maleato de buffer PDA | 5.20 | 5.21 | 5.02 |
6.00 | 5.84 | 5.75 | |
7.00 | 6.53 | 6.45 | |
8.00 | 7.37 | 7.30 | |
8.60 | 7.91 | 7.83 |
uma Média de três amostras é mostrado.
as colônias em PDA livre (pH 5,63) atingiram 60 mm de diâmetro após quatro semanas. Quando o pH do PDA foi elevado com o tampão Tris (pH 6,61, 7,61 e 8,24), o tamanho médio das Colónias foi mais elevado em comparação com o do PDA não abduffered (Figuras 1 e and2A).2A). Perithecia estava presente em PDA livre e todos os Tris buffered media em quatro semanas. Os ascósporos foram observados após quatro semanas em PDA livre e PDA tamponada Tris a pH 6.61 e 7.61, mas não a pH 8.24. Não foram observados ascósporos até oito semanas após a inoculação em PDA tamponada com Tris a 8, 24 pH (Tabela 2).
comparação dos diâmetros das colónias de C. globosum em ágar de dextrose de batata buffer e sem botões. O pH real de cada meio no dia da inoculação é listado no eixo x. Os diâmetros das Colónias eram medidos todas as semanas. O diâmetro máximo de cada placa foi de 83 mm. o erro médio e padrão da média é mostrado (n = 15 placas).
Fotografias de C. globosum colônias em 4 semanas Tris buffer e unbuffered batata dextrose agar (a), no citrato-fosfato tamponada batata dextrose agar (b) e Tris-maleato de buffer de batata dextrose agar (c). O centro de cada placa de ágar foi inoculado com 500 C. esporos globosum suspensos em 20 µL de água. Estas fotografias retratam os lados frontal e reverso das placas de ágar com colónias de C. globosum após quatro semanas de incubação à temperatura ambiente.
Quadro 2
efeito do pH na esporulação.
Médio | Previstos pH do tampão | Fita de apresentação de resultados | |||||
---|---|---|---|---|---|---|---|
Presença de perithecia | a Presença de ascospores | ||||||
Semana 4 | Semana 6 | Semana 8 | Semana 4 | Semana 6 | Semana 8 | ||
Unbuffered PDA | n/a | + | + | + | + | + | + |
Tris buffer PDA | 7.2 | + | + | + | + | + | + |
8.0 | + | + | + | + | + | + | |
9.0 | + | + | + | − | − | − | |
Citrate-phosphate buffered PDA | 3.0 | − | NT | NT | − | NT | NT |
4.0 | − | + | + | − | − | + | |
5.0 | − | + | + | − | − | + | |
6.0 | − | − | + | − | − | − | |
7.0 | − | + | + | − | − | + | |
Carbonato-bicarbonato de buffer PDA | 9.2 | − | − | − | − | − | − |
10.0 | − | − | − | − | − | − | |
10.7 | − | − | − | − | − | − | |
Tris-maleato de buffer PDA | 5.2 | − | − | − | + | + | + |
6.0 | + | + | + | + | + | + | |
7.0 | + | + | + | + | + | + | |
8.0 | + | + | + | − | + | + | |
8.6 | + | + | + | + | + | + |
uma Fita lâminas foram tomadas a partir de uma única placa de agar em quatro, seis ou oito semanas pós-inoculação. A presença ou ausência de peritecia e ascósporos é indicada com um “+” ou “−” respectivamente. As amostras não colhidas são indicadas por “NT”.
foi utilizado um tampão de fosfato citrato para obter PDA que varia em pHs de 3, 51 a 7, 01 (Quadro 1). As colónias cultivadas com um pH de 7.01 cobriram toda a placa (83 mm de diâmetro) quatro semanas após a inoculação (figura 2B). À medida que o pH diminuía em cada meio, o tamanho das Colónias diminuía. Após quatro semanas, as colónias cresceram a um pH de 3.51 atingiram apenas uma média de 11 mm de diâmetro (Figura 1) e não foram observados filamentos hifais nas lâminas de fita (dados não apresentados). Com um pH de 4.28, 5.17, 6.07 e 7.01, nenhum peritecia foi produzido quatro semanas após a inoculação, mas acabou formando oito semanas após a inoculação. Após oito semanas, os ascósporos estavam presentes com um pH de 4, 28, 5, 17 e 7, 01 (Tabela 2).
o tampão bicarbonato-carbonato elevou o pH da PDA mais elevado do que o tampão Tris (pH 9, 07, 9, 25 e 9, 35) (Quadro 1). A dimensão média das colónias em cada meio tampão carbonato-bicarbonato foi mais baixa em comparação com a PDA tamponada citrato-fosfato com um pH de 7,01 (Figura 1). Não foram observados peritécios ou ascósporos às 4, 6 ou 8 semanas após a inoculação (Tabela 2).O tampão Tris-maleato de
resultou em PDA variando de pH entre 5.21 e 7.91 (Quadro 1). Depois de duas semanas, os maiores colônias foram observadas com o menor pH. Aos três e quatro semanas, as colônias com o maior diâmetro foram em PDA com um pH de 7.37 e 7.91 (Figuras 1 e and2C).2C). Às quatro semanas, numerosos ascósporos foram observados com um pH de 5.21 e 5.84, enquanto poucos ou nenhuns ascósporos foram vistos no outro PDA tamponado com Tris-maleato (dados não apresentados). Em seis semanas, os ascósporos foram produzidos em cada meio (Tabela 2).
globalmente, as maiores colónias foram obtidas a um pH neutro (7.01) (Figura 1). Em duas semanas, essas colônias foram significativamente maiores em comparação com qualquer outro meio. Em quatro semanas, o tamanho médio da colônia para cada meio foi significativamente menor, exceto em um pH de 6.07, 7.37, 7.61, e 7.91 em comparação com um pH de 7.01 (dados não mostrados). O número total de esporos para cada grupo foi determinado como descrito anteriormente . Níveis detectáveis de ascospores foram observadas as seguintes três, de dezassete de mídia em quatro semanas pós-inoculação: 4,240,000 esporos por grupo (por exemplo, cinco placas de agar) em unbuffered PDA (pH 5.63); 13,500,000 e 2,960,000 esporos por grupo de Tris-maleato de buffer PDA, pH 5.21 e 6.53, respectivamente. Lâminas de fita revelaram a produção de ascósporos em quatro outros meios tamponados (PDA tamponado Tris em pH de 6,61 e 7,61; PDA tamponado Tris-maleato em pH de 8,84 e 7.91) (Tabela 2), que estava abaixo do limite de detecção do hemacitómetro (10 000 esporos/mL). A produção de chaetoglobosinas A E C foi avaliada como descrito anteriormente utilizando HPLC . A chaetoglobosina C Foi detectada a um pH de 7,01 (uma média de 203 µg por cinco placas de ágar), mas não a partir de meios a qualquer outro pH (Figura 3). Não foi detectada chaetoglobosina a em nenhuma das amostras (dados não apresentados).
cromatograma de HPLC com espectros UV do Pico seleccionado inserido. O cromatograma indica o sinal obtido a partir do extracto de metanol de C. globosum cultivado em cinco placas de ágar de dextrose de batata tamponada com fosfato de citrato a um pH de 7,01 durante quatro semanas. Os tempos de retenção (min) São traçados no eixo dos x e as dimensões dos Picos (em unidades de absorvância Mili) no eixo dos Y. Para o espectro UV (inset), comprimentos de onda (em nanômetros) são plotados no eixo x e tamanhos de pico (em unidades de absorvância Mili) no eixo Y.
poucos estudos examinaram a influência do pH ambiente no crescimento de C. globosum. A gama de pH ideal para o crescimento de C. globosum foi descrita anteriormente como 7.1 a 10.4 . Os nossos resultados indicam que este fungo pode crescer ao longo de uma gama de diferentes valores de pH (aproximadamente 4,3 a 9,4). Embora C. globosum tenha crescido a um pH de 3,51, essas colônias eram pequenas em tamanho e tinham uma morfologia anormal (Figura 2). O crescimento de C. globosum é ótimo em um pH neutro (Figura 1).
níveis detectáveis de chaetoglobosina c só foram observados no meio com as maiores colónias de C. globosum. Este achado é consistente com nossos resultados de um estudo anterior que sugerem que a produção de chaetoglobosinas está diretamente relacionada ao crescimento. Depois de examinar o crescimento de C. globosum em quatro mídias comercialmente disponíveis, descobrimos que o meio que suportava o melhor crescimento também suportava a maior produção de chaetoglobosinas A E C.O pH ambiente demonstrou influenciar a produção de metabolitos noutros Fungos Filamentosos. O melhor sistema regulatório estudado é o Aspergillus nidulans, que é controlado por um fator de transcrição chamado PacC . Em condições alcalinas, o PacC activa genes de expressão alcalina, tais como o acvA e o ipnA, que estão envolvidos na síntese da penicilina e reprime genes expressos em ácido, tais como o stcU, que está envolvido na síntese da esterigmatocistina. Outros fungos filamentosos com PacC homologs incluem Aspergillus niger, Aspergillus oryzae, Penicillium chrysogenum, Acremonium chrysogenum, Sclerotinia sclerotiorum , e Fusarium verticillioides . Uma proteína hipotética semelhante ao PacC foi localizada dentro do genoma de C. globosum . Assumindo que este fungo tem um sistema regulatório semelhante ao de A. nidulans, estes resultados sugerem que a produção de chaetoglobosin não está sob o seu controlo.
a formação de peritecia e ascósporos por C. globosum parece ser favorecida em um ambiente ácido e inibida sob condições básicas em um meio artificial. Após quatro semanas, os ascósporos estavam presentes em níveis detectáveis em PDA não sofredora (pH 5, 63) e PDA tamponada Tris-maleato (pH 5, 21 e 6, 53) (Tabela 2). C. globosum eventualmente produziu pertecia e ascósporos em PDA tamponada com citrato-fosfato oito semanas após a inoculação. Nenhum ascósporo foi produzido em Tris buffered PDA em pH 8.24 ou no PDA de bicarbonato-carbonato tamponado a pH 9.07, 9.25 e 9.35 (Quadro 2). Também é possível que esta inibição da esporulação a um pH básico se deva à presença de um dos componentes do tampão, embora o mecanismo permaneça desconhecido no momento.