小さな反芻動物のクラミジア感染に関する研究のほとんどは雌牛に関係しているが、クラミジア症は世界中の多数のヤギ農場で経済的および公衆衛生上の影響を与えている。 クラミジアの中絶は1959年にドイツで初めて報告された。その後、ブルガリア、スペイン、アメリカ、フランス、インド、日本、イギリス、チャド、ギリシャ、チュニジアで診断された。 多くの地域では、クラミジア中絶はブルセラ症の後に感染性中絶の第二の原因であり、ブルセラ症が制御されている国のほとんどの主な原因である
Aetiology
この疾患は、真核細胞の細胞質内で耐性感染型、基本体（EB）が代謝的に活性な非感染型と交互に発達するユニークなサイクルで成長する小さなグラム陰性細菌、クラミジアpsittaciによるものである。ポジションはmf（rb）。 EBは宿主細胞の膜に付着し、リソソームと融合しない封入体と呼ばれる膜限定液胞でそれ自身のエンドサイトースを促進する。 次に、ebはRBに変換され、これは二元核分裂によって複製される。 いくつかの分割の後、すべての包含物を満たすRBsは、感染性EBsに戻って変換します。 これらのEBsは、宿主細胞の溶解または宿主細胞からの封入体の押出によって放出される。
分類学
Chlamydia psittaciは、chlamydia trachomatis、Chlamydia pneumoniae、Chlamydia pecorumを含むchlamydia属の四つの種の一つである。
chlamydia trachomatisとchlamydia pneumoniaeは共にヒトの病原体である。 C.psittaciはさまざまな鳥類、哺乳類、時には人間に感染し、C.pecorumは反芻動物、豚、コアラを汚染します。 雌羊およびヤギでは、c.pecorumは肺炎、結膜炎および関節炎を引き起こすが、無症候性の腸感染症から非常に頻繁に隔離される。
非常にまれな例を除いて、ヤギの中絶を誘発する株はc.psittaci血清型-1に属し、肺炎、結膜炎および関節炎、時には臨床徴候のない腸内感染の原因となる。 Ｃ．ｐｓｉｔｔａｃｉ種は非常に不均一であり，第四種Ｃ．ｐｅｃｏｒｕｍが出現する前であった。
16Sおよび23S rRNA遺伝子の系統発生分析は、クラミジア科における九つの分化種の存在を示唆しており、lead Everett et al. クラミジアとクラミドフィラの二つの新しい属の創造を提案する。 クラミジア属には、c.trachomatis（ヒト株）、c.suis（自発的中絶、膣感染症、pneumoniaeから単離されたC.trachomatisに関連するブタ株）、C.muridarum（マウス-ハムスター株）の3種が含まれる。
クラミドフィラ属は、c.pneumoniae、C.pecorum、C.psittaci（以前のchlamydia psittaci鳥類株）、c.caviae、モルモット封入結膜炎（GPIC）の薬剤、C.felis（猫に感染するC.psittaci株）、C.caviaeの6種を再編成する。 abortus（古典的な血清型-1クラミジアpsittaci株）。 結果は、他の五つのコード遺伝子（GroEL、KDO-トランスフェラーゼ、MOMP、60-kDaシステインに富むタンパク質、およびシステインに富むリポタンパク質）と株の生物学的性質の系統学的解析によって得られたものと一致している。 16S-23S rRNA遺伝子のリボソーム遺伝子間スペーサドメインの制限長多型解析（RFLP）は、新種のクラミジア株を識別し、分類するための迅速かつ再現可能な方法 しかし、科学界のいくつかのmemebersは、細菌の全ゲノムを考慮に入れていないので、新しいクラミジア分類法の提案に同意しない。
臨床徴候
クラミジア症は、臨床的には、妊娠の最後の数ヶ月間の中絶、死産または低出生体重の弱い子供の早産によって特徴付けられる。 中絶は、いくつかのヤギが息切れ、または関節炎や角結膜炎なしに持続的な咳を開発することができる場合でも、以前の臨床的な特定の兆候なしに 実験的感染症では、いくつかのヤギで中絶の前日にわずかな膣分泌物が観察された。 保持された胎盤およびmetritisは、たとえ彼らが雌羊よりも頻繁であっても、通常ではありません。 中絶の後、ヤギは急速に回復するか、または膣から茶色の排出を示すかもしれません。 実験的な感染症または中絶率が高いいくつかの自然感染症では、中絶したヤギの50％以下しか迅速に回復しなかったが、雌牛の中絶後の病気は珍しい。 これは、株の病原性メカニズムについてはほとんど知られていないため、株間の病原性の違いに起因する可能性があります。 病原性の違いは、オビンとカプリン株の間のマウスモデルで示すことができなかったが、増幅された断片長多型（AFLP）は、カプリン株AC1とオビン血清型-1C.psittaci株
我々は、感染したヤギのサービスが感染した種牡馬をもたらす可能性があることを実証したが、今までc.psittaciによる精巣上体炎は種牡馬に記載されていない。 これはクラミジアの伝染へのラムそして雄牛のより大きい感受性よりもむしろカプリンのクラミジア症の調査の非常に少数がおそらく原因です。
新たに感染した群れでは中絶率が厳しい。 頻繁に30％以上、時には妊娠の90％が中止することがあり、牛乳の生産が減少することがあります。 妊娠中の女性の10％が毎年数年間中止され、新しい流行が発生し、すべてのyearlingsが中止されます。 中絶後に産生される高レベルの免疫力は、群れの病気の周期的な進化の原因であり、ヤギが二度中止することは例外的です。 PappとShewenは、中止された雌羊のいくつかが慢性的に感染する可能性があることを示しています。 クラミジア抗原およびDNAは、流産した雌羊の排卵周囲期間中に膣、子宮および子宮管で検出することができる。 ヤギの群れにおける慢性感染症の発生率を決定するための研究は行われていない。
胎児は特異的な巨視的病変を示さない。 期間の近くに配信された子供たちは、茶色の材料で覆われている可能性があります。 明確なまたは血液染色されたびまん性浮腫、腹部および胸膜腔の血液染色された液体、および舌上の点状出血、頬腔および蹄上でしばしば観察される。
感染すると、妊娠時および妊娠中絶時に胎盤や胎児の体液中に大量のクラミジアが排泄される。 いくつかのヤギは、中絶の前に二週間以上から中絶後二週間以上に膣液中のクラミジアを流すことがあります。 これは、感染に対する感受性が動物の生理学的状態に関連して変化するので、新たに感染したヤギの群れにおける中絶の発生率が高いことを説明 妊娠100日未満のヤギは、妊娠終了時のヤギや不毛のヤギよりも影響を受けやすくなります。 クラミジアの少量はまた、中絶後数日の間に尿、牛乳や糞便中に流すことができます。
感染した母親から生まれた若いヤギは、感染を群れに保持したり、他の群れに伝染させたりする可能性があります。 人生の彼らの最初の年の間に感染した群れの27歳のグループの調査は、彼らが彼らの血清学的反応によって検出されないことによって病気を広 これらの若いヤギは、妊娠/分娩に応じて3つのグループに分けることができます。 最初のグループは通常、生きている子供を子供にし、第二のグループは不毛だったか、検出されるには妊娠の早すぎる中止し、第三のグループでヤギが中止し 二つの最初のグループの補体固定（CF）抗体は、繁殖時に最大（1/80-1/160）に達するように増加し、その後、抗体レベルは冗談の時まで減少した。 第三のグループは、CF抗体価を有していた男性によるクラミジア症の性病伝達はまだ調査する必要がある役割。 ただし、雄羊および雄牛の生殖の伝染は女性の中絶よりもむしろ男性の不妊そして生殖不能症で起因します。 この疾患が不適切な腸感染症において果たす役割と、クラミジア中絶の疫学におけるその影響を探求する必要がある。 カプリンの腸の緊張のための分子マーカーの最近の同一証明はそのような調査を可能にする。
診断
診断は、通常、少なくとも10の血清サンプルの血清学的分析と組み合わせて、塗抹標本または胎盤の印象中の細菌の検出によって行われる。
Stamp、GimenezまたはMachiavello法によるクラミジアの染色は迅速であり、ほとんどの研究室で簡単に行うことができますが、経験豊富な人がクラミジアをブルセラおよびCoxiellaと区別する必要があるため、その解釈はしばしば難しいことです。 蛍光標識されたイソチオシアネートでマークされた免疫グロブリン複合体を用いた免疫蛍光は、塗抹標本または胎盤印象におけるクラミジアの検出の感度および特異性を増加させる。
中絶直後に採取した地上胎盤または膣スワブ中のクラミジア抗原の存在は、ヒトc.trachomatis感染のために開発された診断キットを用いたELISAによって検出
ヒト医学では、ポリメラーゼ連鎖反応（PCR）またはその変異、リガーゼ連鎖反応（LCR）は、クラミジアの診断に利用可能な最も敏感な診断方法であると考えられている。 すべてのタイプのクラミジアに共通するいくつかのプライマーは、Omp1、主要な外膜タンパク質をコードする遺伝子、またはC.psittaciまたはC.pecorumまたは血清型-1C.psittaci株の特異的なものとして、獣医学的応用のために開発されている。 しかし、この技術は高価なままです。
補体固定試験（CFT）は、最も広く使用されており、血清学的診断のためのゴールドスタンダードであると考えられています。 但し、テストがほとんどのヤギが腸で抱くC.のpecorumと共通抗原iを使用するのでCFTは非常に敏感、特定ではないです。 従って、1:10と1:40間の力価との肯定的な反作用は中絶のために特定ではないが、C.pecorumの腸の伝染に関連しているかもしれません。 ＣＦＴ試験は、好ましくは、抗体応答がその最大レベルにあるときに、中絶または跛行の３〜６週間後に行われるべきである。 CFTテストは個々の診断にまたは若者または男性の伝染を検出するために使用することができません。
C.psittaci感染症とC.pecorum感染症を区別するより具体的な技術を開発するためのいくつかの試みが行われた。 しかし、これらのテストのどれも十分に敏感で特異的ではなかった。 最近、80-90kDaのタンパク質の一部を発現する組換え抗原に基づく新しい間接酵素結合免疫吸着アッセイ（ELISA）が開発されています。 この試験は，これらの高度に免疫原性の多遺伝子ファミリー蛋白質に対して早期に誘発された血清抗体と反応する。 このテストに高い感受性および高い特定性があります。
治療
テトラサイクリンはクラミジアの複製に影響を与え、中絶を予防するのに有効であり得る。 20mg/kgのオキシテトラサイクリンを妊娠105日および120日に筋肉内投与することで中絶を防ぐことができるが、クラミジアの脱落を防ぐことはできない。
将来の展望
ワクチン接種された群れの感染したヤギの血清学的検出を保護し、可能にする、前述の生ワクチンと同じくらい効率的なワクチンの開発は、病気の制御に非常に有用であろう。 生ワクチンからの”診断特異抗原”の枯渇は、適切な遺伝的および分子的方法論がまだ利用できず、このタンパク質ファミリーを削除することは困難であ これらの理由から、中絶や排泄から保護する無細胞ワクチンが興味深いでしょう。 これまでの研究では、Tリンパ球とBリンパ球の両方が防御免疫に関与していることが示されている。 マウスモデルでは、ｃｄ８＋Ｔ細胞（マウスではＬｙｔ２＋）は、プライミングされた脾臓細胞の移動後の保護において主要な役割を果たす。 現在までに、C. psittaci T細胞抗原およびエピトープは不明である。 C.trachomatisの結果をc.psittaciに外挿する際には注意が必要であるが、c.trachomatis major outer membrane protein(MOMP)
にはいくつかのT細胞エピトープが同定されている。 特定のポリクローナル血清の受動的転送は、T細胞を介した保護よりも低いにもかかわらず有意な免疫を誘導する。 Cを中和するモノクローナル抗体（Mab）。 インビトロでのpsittaci感染性は、中絶と胎児の植民地化が排除されるので、静脈内チャレンジ後に妊娠したマウスに顕著な免疫を与えます。 体液性免疫は保護に関与している。 その有効性は、適切なエピトープに対する特異的抗体の濃度に依存する。 これまでに単離されたすべての保護Mabは、MOMPオリゴマー上に位置する感熱配座エピトープと反応する。
したがって、MOMPオリゴマーは潜在的なワクチン成分である可能性があります。 しかし、生産コストが大幅に農家がカプリンまたは卵ワクチンのために手頃な価格を検討することを超えるだろうとして、クラミジアからの抽出に したがって、ワクチン生産の代替方法を調査する必要があります。
組換えMOMPオリゴマーの生成は困難な場合があります。 MOMP、Omp1をコードする遺伝子は、よく特徴付けられるが、調節されていないプロモーターからの完全な長さの遺伝子の高レベルの発現は、大腸菌に有毒である。 このため、保護エピトープの生成のための異なる実験戦略が行われた。 我々は、モノクローナル抗イディオタイプ抗体、または立体配座制約ペプチドミモトープと保護エピトープを模倣しようとしたが、それらのどれも効率的では Ｃ．ｔｒａｃｈｏｍａｔｉｓおよびｃ．ｐｓｉｔｔａｃｉに対する七面鳥に対するＭＯＭＰ遺伝子保護マウスによるＤＮＡワクチン接種として，ＤＮＡワクチンによるマウスのワクチン接種を評価することを決定した。 これまでは部分的な保護のみが得られましたが、さらなる研究（標的遺伝子、DNAの濃度、ワクチン接種の経路など）が得られました。）は、マウスが生ワクチンと同じくらい効率的にDNAワクチンで保護できるかどうかを知るために必要である。