Capillaria Ovuli e la Diagnosi di Trichuris trichiura Infezione nell'Uomo da Kato-Katz Striscio, Liberia | Anne Marie

Studio

Per valutare l’effetto di massa drug administration uso di ivermectina e albendazole per l’eliminazione della filariosi linfatica su QLC di prevalenza e l’intensità, abbiamo raccolto i campioni di feci per un periodo di 3 anni in 2 diverse zone in Foya distretto (Contea di Lofa) nel nord-ovest della Liberia e Harper distretto (Contea di Maryland) nel sud-est della Liberia (10). Abbiamo esaminato un singolo campione di feci per soggetto mediante microscopia (ingrandimento ×100) con strisci Kato-Katz duplicati (modello da 41 mg). Abbiamo conservato aliquote di campioni selezionati casualmente su schede FTA (GE Healthcare, Little Chalfont, UK) o in RNAlater (ThermoFisher, Waltham, MA, USA) e li abbiamo spediti alla Washington University School of Medicine (St. Louis, MO, USA) per l’analisi da parte di qPCR. Due microscopisti esperti (L. G., A. T. Momolu) hanno esaminato i campioni da Kato-Katz striscio in entrambe le aree di studio. Per il rilevamento di STH da qPCR, abbiamo estratto il DNA da ≈100 mg di feci e testato come descritto da Pilotte et al. (5) con un termociclatore Quantstudio 6 Flex (Applied Biosystems, Carlsbad, CA, USA) e TaqMan Fast Advanced Mastermix (Applied Biosystems). Abbiamo usato i seguenti primer e sonde per rilevare Schistosoma mansoni DNA: avanti primer 5 ‘- TGTGGGAGTCTTTGGTTGTT-3’, reverse primer 5 ‘- CAACATGACTGGGAACAGGA-3′, sonda 5′-AGGTTCAGGTGG/ZEN/GTGTGTTACGAA-31ABkFQ-3’.

Abbiamo testato 353 campioni di feci del distretto di Foya di Kato-Katz striscio; 31 (8,8%) sono risultati positivi per A. lumbricoides uova, 231 (65,4%) per le uova hookworm, 27 (7,6%) per T. trichiura–like uova, e 276 (78,2%) per S. mansoni uova. Abbiamo testato 225 campioni dal distretto Harper da Kato-Katz striscio; 163 (72,4%) sono risultati positivi per A. lumbricoides uova, 65 (28,9%) per hookworm uova, e 51 (22,7%) per T. trichiura uova (Tabella 1). C’era un buon accordo tra i risultati dei test Kato-Katz e qPCR per i campioni di Harper (80,5% -91,6%), ma generalmente qPCR aveva una sensibilità più elevata. I nostri risultati sono stati coerenti con i risultati precedentemente riportati con campioni provenienti da altre aree (3,11). L’accordo tra i 2 test diagnostici per i campioni di Foya variava dal 77,3% al 92,9%, ma la sensibilità del qPCR era inaspettatamente bassa, un risultato che era particolarmente vero per l’infezione da Ascaris e Trichuris (Tabella 1). Mentre i campioni positivi per Ascaris di Kato-Katz ma negativi per qPCR avevano bassi conteggi di uova, i campioni positivi per Trichuris di Kato-Katz ma negativi per qPCR avevano conteggi più alti; 7 campioni contenevano >1.000 uova a forma di botte/g di feci (Tabella 2). Abbiamo ripetuto l’estrazione del DNA e il qPCR e abbiamo anche usato un qPCR alternativo per T. trichiura (3), ma questi test non hanno migliorato l’accordo tra microscopia e risultati qPCR.

Tabella 1

Confronto tra la sensibilità dello striscio di Kato-Katz e i risultati quantitativi della PCR per 778 campioni di feci testati per elminti trasmessi dal suolo, distretti di Foya e Harper, Liberia
Sito e specie N. positivo* Kato-Katz striscio sensibilità, % qPCR sensibilità, % McNemar valore di p
Foya distretto n = 353
Ascaris lumbricoides 34 91.2 17.6 <0.0001
Hookworm† 247 93.5 83.4 <0.0001
Trichuris trichiura 27 100 7.4 <0.0001
Schistosoma mansoni 307 89.9 84.0 0.0573
Harper distretto n = 225
A. lumbricoides 180 90.6 98.9 0.0013
Hookworm† 99 65.7 89.9 0.0005
T. trichiura 86 59.3 94.2 0.0001

*Campioni che sono risultati positivi con entrambi i metodi.
†Hookworm era Necator americanus. Non è stato rilevato alcun Ancilostoma duodenale.

Tabella 2

Demografia e Kato-Katz e qPCR risultati per i pazienti positivi per Trichuris trichiura infezione da microscopia, Liberia*
dati Demografici la Microscopia, epg qPCR, ciclo soglia
Anno Paziente non. Età, y/sesso Villaggio Tt Al Hk Sm Tt Al Na Sm
2014 P320529 45/F Yallahun 576 0 360 24 Neg Neg 31.7 30.5
P320683 35/F Kpombu 12 0 0 0 Neg Neg Neg 28.4
P320695 16/M Kpombu 24 0 0 72 Neg Neg Neg 23.8
P320620 15/M Foya-Dundu 12 120 0 288 Neg Neg 32.2 23.5
P320746 9/F Bandenin 24 0 0 0 Neg Neg Neg 26.51
P320452 7/F Felaloe 12 0 0 120 Neg Neg Neg 23.9
P320596 6/F Foya-Dundu 12 0 0 90 Neg Neg Neg 27.6
P320656 6/F Kpombu 120 0 0 504 Neg Neg Neg 21.3
2016 P331772 36/M Kpormbu 3,048 0 12 24 Neg Neg Neg Neg
P331921 35/M Felaloe 60 0 0 12 Neg Neg Neg Neg
P331783 34/F Kpormbu 420 0 0 0 Neg Neg Neg Neg
P330724 26/M Keyabendu 4,224 0 0 456 Neg Neg Neg 30.4
P331791 6/F Kpormbu 12 0 156 12 Neg Neg 33.1 33.4
P331962 6/F Bandenin 12 0 0 168 Neg Neg Neg 29.6
P331983 6/F Bandenin 36 0 0 5,304 Neg Neg Neg 28.1
2017 P341287 61/M Mendikorma 1,464 0 0 0 Neg Neg Neg 33.1
P341282 56/M Mendikorma 540 0 216 0 Neg Neg 28.3 Neg
P341284 50/M Mendikorma 60 0 0 132 Neg Neg Neg Neg
P342148 45/M Keyabendu 1,368 0 0 192 Neg Neg 34.5 Neg
P340246 39/M Kamatahun 120 0 0 216 Neg Neg Neg 30.0
P340307 19/F Bambuloe 2,028 0 0 1,188 Neg Neg Neg 24.1
P340133 12/M Fokolahun 1,020 16,392 0 0 25.3 16.7 Neg Neg
P340183 9/F Kpelloe Ndama 72 0 0 0 Neg Neg Neg 36.0
P341308 9/F Mendikorma 36 0 108 0 Neg Neg Neg 28.5
P341326 9/M Mendikorma 456 0 0 0 Neg Neg 26.5 30.4
P341327 6/M Bugia 2,076 0 0 0 Neg Neg Neg Neg
P340147 5/M Fokolahun 48 0 0 0 30.94 26.93 Neg Neg

*T. l’infezione da trichiura è stata confermata da qPCR solo in 2 pazienti, ma 25 avevano uova di Capillaria nelle loro feci. Al, Ascaris lumbricoides; epg, uova per grammo di feci; Hk, hookworm; Na, Necator americanus; Neg, negativo; Sm, Schistosoma mansoni; Tt, T. trichiura.

Per verificare ulteriormente se i campioni di feci Kato–Katz-positivi, qPCR-negativi contenevano uova di T. trichiura, abbiamo esaminato strisci diretti di campioni di feci conservati in RNAlater mediante microscopia (ingrandimento ×100 e ×400) (Figura). I campioni positivi al qPCR contenevano uova (6 misurate) con morfologia tipica di T. trichiura; queste uova avevano una lunghezza media (±DS) di 52 µm (±2,4 µm) e una larghezza di 25,5 µm (±1,3 µm). Al contrario, i campioni qPCR-negativi contenevano uova (31 misurate) con una lunghezza media (±DS) di 51,8 µm (±1,5 µm) e una larghezza di 32,7 µm (±2,1 µm). I campioni qPCR-negativi avevano anche spine meno pronunciate e un guscio spesso e striato, caratteristiche che sono coerenti con le uova di Capillaria hepatica (syn. Calodium hepaticum) e alcune altre specie di Capillaria (Trichuridae). Uova di C. philippinensis o C. aerophila che sono stati osservati in campioni di feci umane in precedenza erano più piccoli o più grandi delle uova di Capillaria trovate in Lofa (12,13). Poiché le spine polari di queste uova sono meno prominenti di quelle di T. trichiura e poiché le loro forme sono a volte più ovali o rotonde, possono anche essere confuse con le uova di A. lumbricoides mediante microscopia a bassa potenza, specialmente se sono state rilevate solo poche uova (Figura).

Un file esterno che contiene un'immagine, illustrazione, ecc. Il nome dell'oggetto è 18-0184-F.jpg

Uova di elminti trovate in campioni di feci da persone nella contea di Lofa, Liberia. A, B) Uova di Trichuris trichiura in campioni positivi per T. trichiura da Kato-Katz striscio e da qPCR. C-F) Uova di Capillaria spp. nei campioni positivo per T. trichiura da Kato-Katz striscio ma negativo per T. trichiura da qPCR. G) Uovo di Capillaria spp. nel campione positivo per Ascari lumbricoides da Kato-Katz striscio ma negativo per A. lumbricoides da qPCR. H) Uovo di A. lumbricoides nel campione positivo per A. lumbricoides da Kato-Katz striscio e qPCR. Le barre della scala indicano 20 µm. qPCR, PCR quantitativa.

I membri della sottofamiglia Capillaridae sono parassiti animali con cicli di vita alquanto divergenti e la maggior parte non infetta gli esseri umani. Si verificano pseudoinfezioni con C. hepatica; le uova trovate nelle feci sono presenti perché sono state consumate nel fegato animale infetto. Tuttavia, le infezioni effettive con C. hepatica non portano al passaggio di uova nelle feci (9). Altre specie come C. philippinensis causano vere infezioni (e autoinfezione) con uova trovate nelle feci; l’infezione è legata al consumo di pesce crudo. La capillariasi umana non è stata segnalata dalla Liberia e solo casi isolati sono stati pubblicati dall’Africa sub-sahariana (7-9). Abbiamo eseguito il sequenziamento del DNA per caratterizzare meglio le specie di Capillaria trovate a Foya. Utilizzando i primer Kt875351.1 (5′-CCCTAGTTGCGACTTTAAACGA-3′) e Capillaria 18S1R (5′- TCCACCAACTAAGAACGGCC-3′), siamo stati in grado di amplificare e sequenziare una porzione di 288 bp del rDNA 18S da campioni T. trichiura qPCR-negativi che contenevano solo uova morfologicamente identificate come Capillaria spp. (GenBank adesione no. MG859285). Il frammento di DNA era identico al 100% agli ortologi di C. hepatica (accession no. MF287972. 1), Aonchotheca putorii (C. putorii) (adesione n. LC052356. 2), e Pearsonema plica (C. plica) (adesione n. MF621034.1), specie di vermi Capillaria che hanno cicli di vita e specie ospiti variabili ma che sono solo il 95% identici all’ortholog di T. trichiura.

Il ciclo vitale e l’importanza medica delle specie Capillaria presenti nell’uomo nella Liberia nordoccidentale rimangono da chiarire. Nel nostro studio alcuni soggetti hanno mostrato elevati carichi di uova Capillaria che possono indicare una vera infezione piuttosto che una pseudoinfezione. Tuttavia, sono stati riportati valori transitori elevati di ovociti in persone con pseudoinfezioni (7). Mentre il consumo di carne arbustiva a Foya è comune, il consumo di pesce crudo o poco cotto, che è necessario per la trasmissione di C. philippinesis, è raro.

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