Clemizol a modulátory serotoninové signalizace potlačují záchvaty u Dravetova syndromu

Abstrakt

Dravetův syndrom je katastrofická dětská epilepsie s časnými záchvaty, zpožděným vývojem jazyka a motoriky, poruchami spánku, úzkostným chováním, závažným kognitivním deficitem a zvýšeným rizikem úmrtí. Je primárně způsobena de novo mutacemi genu SCN1A kódujícího neuronální napěťově aktivovaný sodíkový kanál. Zebrafish s mutací v homologu SCN1A rekapituluje spontánní záchvatovou aktivitu a napodobuje konvulzivní pohyby chování pozorované u Dravetova syndromu. Tady, ukážeme, že fenotypový screening knihoven léčiv u mutantů scn1 zebrafish rychle a úspěšně identifikuje nová terapeutika. Prokazujeme, že klemizol se váže na serotoninové receptory a jeho antiepileptická aktivita může být napodobena léky působícími na signalizační dráhy serotoninu, např. Shodně s těmito nálezy zebrafish jsme léčili pět lékařsky neřešitelných pacientů s Dravetovým syndromem s klinicky schváleným agonistou serotoninového receptoru (lorcaserin, Belviq®) a pozorovali některé slibné výsledky, pokud jde o snížení frekvence záchvatů a/nebo závažnosti. Naše zjištění ukazují rychlou cestu od preklinického objevu u zebrafish, přes identifikaci cíle, k potenciální klinické léčbě Dravetova syndromu.

Úvod

dětské epilepsie klasifikované jako katastrofické jsou často spojeny s genetickou mutací. Mezi nimi byl Dravetův syndrom spojen s více než 600 de novo mutacemi v jediném genu, SCN1A (Catterall et al ., 2010; Escayg a kol., 2010). Děti trpící Dravetovým syndromem vykazují záchvaty již ve věku 6 měsíců, zpožděný jazykový a motorický vývoj, poruchy spánku, úzkostné chování a závažný kognitivní deficit (Dravet, 2011). Byly také hlášeny příznaky poruchy autistického spektra (Li et al ., 2011) a riziko náhlé nevysvětlitelné smrti s epilepsií (SUDEP) v této populaci se odhaduje na 15krát vyšší než u jiných dětských epilepsií (Kearney, 2013). Dostupné antiepileptika nenabízejí adekvátní kontrolu záchvatů a resektivní neurochirurgické postupy nejsou běžně možností. Nová léčba Dravetova syndromu zůstává důležitou neuspokojenou potřebou i přes určitou úroveň účinnosti v omezených klinických studiích s kanabidiolem (Epidiolex®) a stiripentolem (Diacomit®), které mohou být spojeny s kognitivními nebo chuť k jídlu bezpečnostní obavy (Perez et al., 1999; Chiron a kol., 2000; Detyniecki a kol., 2016; Devinsky a kol., 2016).

mutace v SCN1A, genu kódujícím α-podjednotku tvořící póry napěťově řízeného sodíkového kanálu (Nav1. 1), byly identifikovány u téměř 85% pacientů s Dravetovým syndromem (Dravet, 2011). Kanály Nav1.1 přispívají k rychlé depolarizaci neuronálních membrán pozorovaných během generování akčního potenciálu (Hodgkin et al., 1952). U myší heterozygotních pro mutaci ztráty funkce v Nav1. 1 se na počátku života vyvinou spontánní záchvaty citlivé na teplotu a předčasně zemřou kolem postnatálního dne 25 (Yu et al ., 2006; Oakley et al., 2009; Cheah et al., 2012). Akutní elektrofyziologické studie u těchto a souvisejících myší s deficitem Scn1a naznačují snížení hustoty proudu sodíku a související snížení aktivity vypalování pro subpopulaci inhibičních neuronů exprimujících GABA (ale ne excitačních hlavních buněk), které vyvrcholily sníženou synaptickou inhibicí a hyperexcitabilitou sítě (Yu et al ., 2006; Kalume a kol., 2007; Han et al., 2012). Tato hypotéza „interneuronopatie“ je v souladu s jinými formami katastrofických dětských epilepsií a byla potvrzena u myší, kde byl Scn1a selektivně odstraněn z parvalbumin-nebo somatostatin-exprimujících interneuronových subpopulací (Dutton et al ., 2013; Tai et al., 2014). U těchto myší bylo také hlášeno autistické chování (Han et al ., 2012). Zajímavé je, že počáteční studie o lidských excitačních a inhibičních neuronech odvozených pomocí indukované technologie pluripotentních kmenových buněk od dvou pacientů s Dravetovým syndromem uváděly deficity napěťově aktivovaného sodíkového proudu pro oba typy buněk, což naznačuje buď homeostatickou kompenzaci časné ztráty funkce kritického mozkově specifického sodíkového kanálu, nebo další mechanismy přispívající k epileptickému fenotypu pozorovanému u těchto pacientů (Jiao et al., 2013; Liu a kol., 2013).

ačkoli myši a lidské indukované neurony odvozené z pluripotentních kmenových buněk přispívají k našemu pochopení základní patofyziologie Dravetova syndromu, tyto systémy nejsou vhodné pro rychlou identifikaci nových terapií kvůli variabilitě těchto modelů a reprodukovatelnosti kvantitativních měření. Vzhledem k tomu, zebrafish jsou ideální obratlovců modelový systém pro provádění malých molekul fenotypu na bázi obrazovky (MacRae et al ., 2015), a jsou přístupné genetickým manipulacím, zaměřili jsme naše úsilí na mutanta sodíkového kanálu zebrafish. Mutanti Zebrafish, kteří mají mutaci missense se ztrátou funkce v orthologue SCN1A, scn1Lab, byli identifikováni na obrazovce mutageneze (Schoonheim et al ., 2010). Vzhledem k duplikaci celého genomu předků jsou mutanty scn1lab zebrafish haploinsufficient pro Nav1. 1 a analogické scn1a + / – myším nebo pacientům s Dravetovým syndromem. Konvulzivní chování a epizody krátkého interiktálního a dlouhodobého polyspike iktálního elektrografického výboje jsou pozorovány u mutantních larev již 3 dny po oplodnění (dpf)s progresí k robustnějším záchvatovým fenotypům mezi 4 a 7 dpf (Baraban et al ., 2013; Hong a kol., 2016). Mutantní larvy umírají předčasně, vykazují metabolické deficity (Kumar et al ., 2016) a jsou rezistentní na mnoho antiepileptik (AED) (Dinday et al., 2015). Podobně jako u klinické léčby Dravetova syndromu lze určité útlum záchvatové aktivity dosáhnout valproátem, benzodiazepiny, bromidy, stiripentolem a ketogenní dietou (Baraban et al., 2013). Pomocí scn1Lab mutant zebrafish larev a dvoustupňové screeningové strategie založené na fenotypu jsme nyní prověřili více než 2300 sloučenin. Klemizol, antagonista histaminového receptoru (H1) první generace, byl identifikován jako silný inhibitor behaviorální a elektrografické záchvatové aktivity (Baraban et al., 2013). Antihistaminika jsou však kontraindikována u pediatrických populací epilepsie (Miyata et al ., 2011) a analog H1 receptoru u zebrafish vykazuje méně než 50% podobnost s člověkem (Peitsaro et al ., 2007). Zde používáme preklinické modely zebrafish, abychom prokázali, že clemizol, ale ne antihistaminika, vykazují antiepileptickou aktivitu. Na základě vazby ligandu a dalšího cíleného screeningu léků v scn1 mutant zebrafish jsme identifikovali několik serotoninových (5-HT) modulátorů jako účinných při potlačování záchvatů, včetně dvou (trazodon a lorcaserin) sloučenin schválených FDA. Lorcaserin (Belviq®) byl předepsán v rámci programu compassionate use dětem s Dravetovým syndromem a u některých pacientů vedl ke snížení záchvatové aktivity. Navrhujeme, aby modulace 5-HT signalizace představuje nový terapeutický zásah pro tuto katastrofickou dětskou epilepsii.

materiály a metody

údržba Zebrafish

Zebrafish byly udržovány v zařízení akvakultury řízeném světlem a teplotou za standardní světelné / tmavé fotoperiody 14: 10 h. Dospělí zebrafish byli ubytováni v 1.5 l nádrží o hustotě 5-12 ryb na nádrž a krmených dvakrát denně (suchá vločka a / nebo vločka doplněná živými slanými krevetami). Kvalita vody byla průběžně sledována: teplota, 28-30°C; pH 7,4-8,0; vodivost, 690-710 mS / cm. Embrya Zebrafish byla udržována v okrouhlých Petriho miskách v „embryonálním médiu“ sestávajícím z 0,03% instantního oceánu (Aquarium Systems, Inc .) a 0,0002% methylenové modři v reverzní osmóze-destilované vodě. Larvy Zebrafish byly získány z křížení heterozygotních zvířat divokého typu (kmen TL) nebo scn1Lab (didys552) nebo scn1Laa (sa1674), která byla vyvržena do kmene TL. Homozygotní mutanti scn1Lab (n = 2800) mají dispergované melanosomy a vypadají viditelně tmavší o 3 dpf ve srovnání s larvami divokého typu. Homozygotní mutanti scn1Laa byli zpočátku identifikováni pomocí behaviorálních a elektrofyziologických testů na všech potomcích (n = 288; obr. 1) a potvrzeno post hoc polymerázovou řetězovou reakcí (PCR), protože se viditelně podobají larvám divokého typu. Protokoly péče a údržby splňují požadavky uvedené v Příručce pro péči a používání zvířat (ebrary Inc., 2011) a byly schváleny Výborem pro institucionální péči o zvířata a použití (protokol # AN108659-02).

Obrázek 1

potvrzení antiepileptické aktivity klemizolu. A) chemická struktura klemizolu. (B) graf znázorňující změnu průměrné rychlosti 5 dpf scn1lab mutantních larev léčených čtyřmi koncentracemi klemizolu. Lokomoce byla zaznamenána po dobu 10 minut po expozici 30 minut (modré pruhy) a 90 minut (žluté pruhy). Každý pruh představuje průměrnou změnu rychlosti ± SEM ze tří nezávislých experimentů šesti ošetřených larev. Prahová hodnota pro významné snížení rychlosti je ≥40% (červená čára). Šrafované tyče ukazují, že byla pozorována toxicita. (C) lokomoce sledování plot pro 5 DPF larvy z scn1Laa heterozygotní kříž. Larvy byly hodnoceny podle jejich plaveckého chování (stupeň 0 až stupeň III). D) reprezentativní záznam lokálního potenciálu pole z předního mozku larvy klasifikované ve stadiu III vložené do agaru. Byly pozorovány malé a velké amplitudy spontánního výboje. E) graf znázorňující průměrnou rychlost plavání 12 larev, Stadium III „domnělé mutanty scn1Laa“ a „domnělé kontroly sourozenců“. Předpokládané mutanty scn1Laa byly potvrzeny PCR. Význam byl určen jednosměrnou anovou následovanou Holm-Sidakovým testem. (F) graf ukazující rychlost neošetřených mutantů scn1Laa (modré pruhy) a následné ošetření 250 µM stiripentolu (stp), diazepamu (dzp), klemizolu (clem) a lamotriginu (ltg) (žluté pruhy). Každý sloupec představuje střední rychlost ± SEM. Ke stanovení významnosti byl použit studentův párový t-test. * P < 0,05; * * P < 0,01.

Obrázek 1

potvrzení antiepileptické aktivity klemizolu. A) chemická struktura klemizolu. (B) graf znázorňující změnu průměrné rychlosti 5 dpf scn1lab mutantních larev léčených čtyřmi koncentracemi klemizolu. Lokomoce byla zaznamenána po dobu 10 minut po expozici 30 minut (modré pruhy) a 90 minut (žluté pruhy). Každý pruh představuje průměrnou změnu rychlosti ± SEM ze tří nezávislých experimentů šesti ošetřených larev. Prahová hodnota pro významné snížení rychlosti je ≥40% (červená čára). Šrafované tyče ukazují, že byla pozorována toxicita. (C) lokomoce sledování plot pro 5 DPF larvy z scn1Laa heterozygotní kříž. Larvy byly hodnoceny podle jejich plaveckého chování (stupeň 0 až stupeň III). D) reprezentativní záznam lokálního potenciálu pole z předního mozku larvy klasifikované ve stadiu III vložené do agaru. Byly pozorovány malé a velké amplitudy spontánního výboje. E) graf znázorňující průměrnou rychlost plavání 12 larev, Stadium III „domnělé mutanty scn1Laa“ a „domnělé kontroly sourozenců“. Předpokládané mutanty scn1Laa byly potvrzeny PCR. Význam byl určen jednosměrnou anovou následovanou Holm-Sidakovým testem. (F) graf ukazující rychlost neošetřených mutantů scn1Laa (modré pruhy) a následné ošetření 250 µM stiripentolu (stp), diazepamu (dzp), klemizolu (clem) a lamotriginu (ltg) (žluté pruhy). Každý sloupec představuje střední rychlost ± SEM. Ke stanovení významnosti byl použit studentův párový t-test. * P < 0,05; * * P < 0,01.

monitorování záchvatů

u 5 dpf byly jednotlivé larvy zebrafish umístěny do jediné jamky čiré 96jamkové mikrodestičky obsahující embryonální média s plochým dnem. Larvy byly vybrány náhodně, protože určení pohlaví není v této fázi možné. Mikrodestičky byly umístěny uvnitř zařízení pro sledování pohybu DanioVision a aklimatizovány po dobu 20 minut při pokojové teplotě. Lokomotivní grafy byly získány pro každou jamku během záznamové epochy 10 min pomocí systému DanioVision se softwarem EthoVision XT (DanioVision, Noldus Information Technology); nastavení detekce prahu pro identifikaci objektů tmavších než pozadí bylo optimalizováno pro každý experiment. Hodnocení záchvatů bylo provedeno pomocí následující třístupňové stupnice stanovené pro záchvaty vyvolané pentylenetetrazolem (Baraban et al ., 2005): fáze 0, žádná nebo velmi malá plavecká aktivita; Fáze I, zvýšená, krátké záchvaty plavecké aktivity; fáze II, rychlé „vířivé“ krouživé plavání; a fáze III, paroxysmální křeče podobné klonu celého těla a krátká ztráta držení těla. Ryby divokého typu jsou obvykle hodnoceny ve fázi 0 nebo i. Grafy byly analyzovány pro ujetou vzdálenost (v milimetrech) a střední rychlost(v milimetrech za sekundu). Jak bylo uvedeno dříve (Winter et al., 2008; Baraban et al., 2013), změny rychlosti byly nejcitlivějším testem záchvatového chování.

pro elektrofyziologické studie byly larvy zebrafish krátce paralyzovány α-bungarotoxinem (1 mg/ml) a imobilizovány v 1, 2% agarose; záznamy lokálního potenciálu pole byly získány ze struktur předního mozku pomocí techniky s jednou elektrodou, jak bylo dříve popsáno (Baraban et al., 2005; Hong a kol., 2016). Pro každou rybu při 1 kHz byly získány relace záznamu potenciálu místního pole vložené do agarosy 10 na 30 min. Systém iZAP (Hong et al., 2016) byl použit pro dlouhodobé neinvazivní sledování zebrafish v nepřítomnosti paralyzujícího činidla. Systém autonomně zachycuje několik larev zebrafish pod několika integrovanými povrchovými elektrodami v mikrofluidních komorách. larvy scn1Lab byly nepřetržitě monitorovány po dobu 5 hodin. potenciál elektrického pole byl zaznamenáván při 1 kHz nepřetržitě s výjimkou 2-až 3-min přestávek pro změnu média pro ošetření a mytí sloučenin. Zaznamenaná data byla analyzována pomocí MATLABu pro grafy potenciálu pole a frekvenční analýzu.

screening složené knihovny

sloučeniny pro screening léků byly zakoupeny od Selleck Chemicals a byly poskytnuty jako 10 mM DMSO roztoky. Pro screening byla použita selleckova Knihovna ligand s iontovým kanálem (Katalog #L2700), složená knihovna GPCR (Katalog #L2200) a přizpůsobená 5-HT modulační knihovna. Knihovní sloučeniny jsou uvedeny v doplňkové tabulce 1. Na všech obrazovkách knihovny léčiv byly sloučeniny kódovány a experimenty byly prováděny vyšetřovateli, kteří byli slepí k povaze sloučeniny. Základní záznamy lokomočního chování byly získány z mutantů v embryonálním médiu, jak je popsáno výše; druhý lokomoční Graf byl poté získán po změně roztoku na zkoušenou sloučeninu a rovnovážném období 20 min. Sloučeniny pro studie lokomoce byly rozpuštěny v embryonálním médiu a byly testovány v koncentraci 250 µM s konečnou koncentrací DMSO 2,5%.

kritéria pro určení pozitivního nálezu byla následující: i) snížení průměrné rychlosti o ≥40% a ii) snížení chování záchvatů na stupeň 0 nebo stupeň I v lokomoce nejméně u 50% testovaných ryb. Každá zkoušená sloučenina klasifikovaná jako „pozitivní hit“ v testu lokomoce byla hodnocena na toxicitu přímou vizualizací na stereomikroskopu po 90 min expozici léku. Toxicita (nebo mortalita) byla definována jako žádný viditelný srdeční rytmus nebo pohyb v reakci na vnější stimulaci u nejméně 50% testovaných ryb. Hyperexcitabilita byla definována jako sloučenina způsobující ≥40% zvýšení rychlosti plavání a / nebo záchvatové aktivity stadia III u nejméně 50% testovaných ryb. Pozitivní zásahy zjištěné na primární obrazovce lokomoce byly potvrzeny pomocí metody screeningu lokomoce ve druhém testu s nezávislou spojkou zebrafish. Sloučeniny byly poté zakoupeny odděleně od Sigma-Aldrich a potřetí testovány metodou screeningu lokomoce na nezávislé spojce zebrafish. Léky, které snížily průměrnou rychlost plavání nad prahovou hodnotu a byly netoxické ve třech nezávislých testech lokomoce, byly dále analyzovány pomocí elektrofyziologického testu. V elektrofyziologických studiích byly léky nejprve potvrzeny v koncentraci 250 µM pomocí lokomočního testu a poté byl stejný zebrafish hodnocen pomocí lokálního záznamu potenciálu pole. Veškerý screening byl proveden s kódovanými sloučeninami a analyzován vyšetřovateli zaslepenými identitou sloučeniny.

fylogenetická analýza

fylogenetická analýza lidských htr2 a htr2 proteinových sekvencí zebrafish byla provedena pomocí softwaru PhyML v rámci testovacích parametrů pravděpodobnostního poměru SH (http://www.phylogeny.fr/) (Dereeper et al ., 2008). Proteinové sekvence byly odvozeny ze sekvencí Ensembl human HTR2A (ENST00000542664), HTR2B (ENST00000258400), HTR2C (ENST00000276198) a zebrafish htr2aa (ENSDART00000141502), htr2ab (ENSDART00000150982), htr2b (ENSDART00000104569), htr2cl1 (ENSTART00000024191).

kvantitativní analýza exprese mRNA v reálném čase

hladiny exprese genů zebrafish htr2 byly zkoumány pomocí RNA sdružené z 25 hlav nebo ocasů z 5 dpf divokých nebo scn1Lab homozygotních mutantních larev a pitvaných mozků z jednotlivých dospělých samců zebrafish divokého typu. Celková RNA byla extrahována pomocí činidla TRIzol® (Invitrogen) podle protokolu výrobce a ošetřena Dnázou I (Invitrogen). Purifikovaná mRNA byla retrotranscribována na cDNA pomocí systému syntézy prvního řetězce SuperScript®III (Invitrogen)se směsí oligo (dT)20. Hladiny exprese genů htr2 zebrafish a eukaryotický translační elongační faktor 1 alfa 1, jako 1 (eef1a1l1), byly stanoveny pomocí PCR stroje StepOne™ v reálném čase (Applied Biosystems). Reakce byly provedeny ve 20 µl objemech na 96 jamkových deskách pomocí SYBR®Green Master Mix (Applied Biosystems), s 250 nM primerem a 3 µl cDNA. Oligonukleotidové sekvence jsou uvedeny v doplňkové tabulce 2. Data byla analyzována ze tří nezávislých experimentů. Data byla vyjádřena jako hodnoty Ct a použita k určení hodnot ΔCt.

studie na lidech

po úspěšné identifikaci sloučenin v našem modelu zebrafish a zvážení farmakokinetiky byly dětem předepsány Belviq® (lorcaserin) podle protokolu o soucitném použití v dětské nemocnici Colorado (IND 125307). Děti se kvalifikovaly pro použití přípravku Belviq®, pokud měly mutaci SCN1A nebo klinickou diagnózu Dravetova syndromu, a v některých případech selhaly alespoň dva léky včetně stiripentolu a s výjimkou blokátorů sodíkových kanálů. Děti byly povinny mít elektrokardiogram a echokardiogram na začátku léčby a každých 6 měsíců během používání přípravku. Kromě toho byli povinni provádět následné návštěvy každé 3 měsíce, aby zajistili přiměřený růst, a také posoudit další vedlejší účinky. Laboratorní vyšetření bylo vyžadováno každých 6 měsíců, aby zahrnovalo hematologické vyšetření, vyšetření jaterních funkcí a vyšetření renálních funkcí. Dávka přípravku Belviq® byla zahájena dávkou 2, 5 mg před spaním a podle potřeby se postupně zvyšovala týdně na maximální dávku 10 mg dvakrát denně nebo 0, 3 mg/kg/den—podle toho, co nastane dříve.

pro retrospektivní sběr dat včetně vzdání se souhlasu bylo získáno schválení institucionální revizní komise. Data byla získána ze retrospektivního přehledu elektronických lékařských záznamů v dětské nemocnici Colorado včetně věku, typů záchvatů a frekvence před a po použití přípravku Belviq®, nežádoucích účinků, dávky přípravku Belviq® a souběžného užívání léků.

Statistická analýza

údaje jsou prezentovány jako střední ± standardní chyba průměru (SEM), pokud není uvedeno jinak. Pro srovnání dvou skupin byl použit Studentův t-test. Pokud rozptyl neměl normální rozdělení, byl použit neparametrický Mann-Whitneyho u-test. Jednosměrná ANOVA po Dunnettově vícenásobném srovnávacím testu pro analýzu proti kontrolnímu vzorku nebo Holm-Sidakově několikanásobném srovnání mezi prostředky. Rozdíly považované za statisticky významné jsou označeny hvězdičkami (*P < 0,05; * * P < 0,01).

výsledky

vliv klemizolu na chování při záchvatech u zebrafish

léčili jsme larvy mutantů scn1Lab (5 dpf) klemizolem v koncentracích mezi 30 a 400 µM a poté monitorovali účinek na chování při spontánním záchvatu pomocí softwaru pro automatické sledování lokomoce. Na základě 250 opakovaných kontrolních studií lokomoce u neléčených mutantů scn1Lab bylo jako prahová hodnota pro pozitivní potlačení záchvatového chování stanoveno snížení průměrné rychlosti plavání ≥40% (>1,5 × SD) od výchozí hodnoty. Klemizol (Obr. 1A) vykazovala antiepileptickou aktivitu při 300 a 400 µM (expozice 30 minut) a při 100 µM (expozice 90 minut) (obr. 1B); dlouhodobé expozice byly toxické při vyšších koncentracích. Abychom zjistili, zda klemizol může potlačit spontánní záchvatové chování u druhého zebrafish scn1 mutant, Prověřili jsme mutantní larvy scn1Laa (5 dpf)v testu sledování lokomoce. Larvy identifikované jako záchvatové chování ve stadiu III (např. křeče celého těla, vysokorychlostní plavecká aktivita a krátká ztráta držení těla; obr. 1C) byly potvrzeny jako vykazující elektrografické výboje s interiktálními a iktálními složkami v následných polních záznamech z předního mozku (obr. 1D). Průměrná rychlost plavání pro larvy identifikované jako S3 nebo „domnělé mutanty scn1Laa“ zebrafish byla významně vyšší než u kontrol sourozenců nebo u všech testovaných larev (obr. 1e); mutanti byli post hoc PCR potvrzeni jako scn1Laa homozygoti. Poté jsme testovali léky, u nichž bylo dříve prokázáno, že potlačují spontánní záchvaty u Dravetova syndromu a mutantů scn1Lab (250 µM stiripentol a 250 µM diazepam), jakož i 250 µM lamotrigin (AED, který může zhoršit záchvaty u Dravetova syndromu). Podle očekávání stiripentol a diazepam, ale ne lamotrigin, významně potlačily záchvatové chování u larev mutovaných scn1Laa; v tomto testu byl také účinný clemizol o velikosti 250 µM( obr. 1F). Společně tyto studie ukazují, že klemizol může potlačit záchvatové chování ve dvou různých liniích scn1 mutant zebrafish.

zkoumání mechanismu účinku klemizolu

protože je známo, že antihistaminika zhoršují pediatrické epilepsie a zebrafish H1 ukazuje špatnou homologii s člověkem (Peitsaro et al ., 2007), předpokládali jsme, že clemizol nevyvíjí antiepileptickou aktivitu prostřednictvím antihistaminergního mechanismu účinku. Abychom otestovali tuto hypotézu, prohledali jsme v naší databázi všechny sloučeniny s anti-histimanergními vlastnostmi. Bylo identifikováno čtyřicet devět léků z naší screeningové databáze více než 2300 sloučenin. None of these were effective in suppressing scn1Lab mutant seizure behaviour in the locomotion assay. Several increased locomotor activity (thioperamide, A4730, mepyramine maleate, R-methylhistamine, mebhydrolin napthalenesulphonate, clemastine fumarate, azatadine dimaleate, chlorpheniramine maleate, and clemastine fumarate) or were found to be toxic (chlorpheniramine maleate, cinnarazine, promethazine hydrochloride, desloratadine, hydroxyzine, and cyclizine) (Supplementary Fig. 1). Dále byl proveden test radioaktivní vazby na 132 cílech, včetně různých receptorů, iontových kanálů, transportérů, enzymů a druhých poslů (obr. 2 a doplňkový obr. 2). Podle očekávání má klemizol velmi vysokou vazebnou afinitu k H1 receptoru (99%). Další nejvyšší afinita jako agonista byla pro dvě postsynaptické podjednotky receptoru 5-HT, HTR2A (86%) a HTR2B (83%). Další pozitivně identifikované cíle s procentními hodnotami inhibice mezi 50 a 78% zahrnovaly modulátory iontových kanálů a další receptory spojené s G-proteinem (GPCRs).

Obrázek 2

Radioligand vazebný test k identifikaci vazebných cílů klemizolu. Clemizol byl podroben radioligand vazebnému testu proti 132 cílům. Ukazuje se funkční agonistická aktivita klemizolu proti 67 cílům. Vazba sloučenin byla vypočtena jako % inhibice vazby radioaktivně značeného ligandu specifického pro každý cíl. Inhibice nebo stimulace vyšší než 50% a jsou zastoupeny žlutě a jsou považovány za významné účinky klemizolu.

Obrázek 2

Radioligand vazebný test k identifikaci vazebných cílů klemizolu. Clemizol byl podroben radioligand vazebnému testu proti 132 cílům. Ukazuje se funkční agonistická aktivita klemizolu proti 67 cílům. Vazba sloučenin byla vypočtena jako % inhibice vazby radioaktivně značeného ligandu specifického pro každý cíl. Inhibice nebo stimulace vyšší než 50% a jsou zastoupeny žlutě a jsou považovány za významné účinky klemizolu.

abychom zjistili, zda léky modulující iontové kanály, GPCRs nebo 5-HT signalizace by mohla rekapitulovat aktivitu clemizolu potlačující záchvaty v larvách mutantů scn1Lab, získali jsme komerčně dostupné složené knihovny zahrnující tyto tři kategorie. V zaslepeném screeningu založeném na fenotypu jsme testovali sloučeniny na jejich schopnost snížit průměrnou rychlost plavání 5 mutantů DPF scn1Lab v koncentraci 250 µM(n = 6 ryb na léčivo). Grafy pro test prvního průchodu na všech 368 sloučeninách jsou znázorněny na obr. 3A-C. Sloučeniny, které snížily pohyb (měřeno jako změna průměrné rychlosti) o ≥40%, byly považovány za významné. Pět sloučenin z knihovny ligand iontových kanálů (9,6%), 27 z knihovny sloučenin GPCR (10,6%) a 10 z knihovny sloučenin 5-HT (16,1%) bylo identifikováno jako pozitivní zásahy. Následné opětovné testování těchto sloučenin bylo provedeno na samostatné spojce mutantů scn1Lab při 250 µM; dalších pět hraničních sloučenin z knihovny 5-HT bylo také znovu testováno. AED (valproát sodný a karbamazepin) dříve hodnocené u larev scn1Lab (Baraban et al ., 2013) nebyly zvažovány pro další testování (obr. 4). Z znovu testovaných sloučenin, jedna z knihovny iontových kanálů, šest z knihovny sloučenin GPCR a dvě z knihovny sloučenin 5-HT bylo potvrzeno, že snižují rychlost. Dále byly všechny identifikované sloučeniny nezaslepeny a získány od komerčních dodavatelů pro třetí test chování při 250 µM. TCB-2 byl také dále charakterizován vzhledem k jeho hlášené identifikaci při snižování epileptiformní aktivity (Sourbron et al ., 2016). Ve třech knihovnách bylo 100 sloučenin (27,1%) identifikováno jako „toxické“ a 53 sloučenin (14.4%) byly klasifikovány jako „hyperexcitační“, tj. vedly ke zvýšení rychlosti plavání (doplňková Tabulka 1). Pozitivní hity, které byly netoxické ve třech nezávislých testech lokomoce, přešly na sekundární elektrofyziologický test.

obrázek 3

shrnutí screeningu knihovny behaviorální lokomoce pomocí larev scn1lab mutant zebrafish. Grafy chování lokomotorických záchvatů pro 5 mutantů DPF scn1Lab promítaných proti (a) 52 ligandům iontových kanálů, (B) 254 sloučeninám GPCR ligandům a (C) 65 5-HT modulačním sloučeninám. Prahová hodnota pro inhibici záchvatové aktivity (pozitivní hity) byla stanovena jako snížení průměrné rychlosti plavání o ≥40% (červená čára). Modré datové body představují sloučeniny, které byly klasifikovány jako toxické, protože ošetřené larvy nemají viditelný srdeční tep nebo pohyb v reakci na dotek po 90minutové expozici.

obrázek 3

shrnutí screeningu knihovny behaviorální lokomoce pomocí larev scn1lab mutant zebrafish. Grafy chování lokomotorických záchvatů pro 5 mutantů DPF scn1Lab promítaných proti (a) 52 ligandům iontových kanálů, (B) 254 sloučeninám GPCR ligandům a (C) 65 5-HT modulačním sloučeninám. Prahová hodnota pro inhibici záchvatové aktivity (pozitivní hity) byla stanovena jako snížení průměrné rychlosti plavání o ≥40% (červená čára). Modré datové body představují sloučeniny, které byly klasifikovány jako toxické, protože ošetřené larvy nemají viditelný srdeční tep nebo pohyb v reakci na dotek po 90minutové expozici.

obrázek 4

tepelná mapa pozitivních sloučenin identifikovaných ze tří cílených knihoven. % Změna rychlosti je zobrazena pro šest jednotlivých larev z prvního průchodu (1-6). Údaje o průměrné rychlosti od šesti ryb jsou uvedeny pro pokus první a pokus druhý. Léky, které snížily průměrnou rychlost plavání nad prahovou hodnotu a byly netoxické ve třetí studii s použitím Samostatně získávané sloučeniny, jsou zvýrazněny tučně. Tyto pozitivní sloučeniny byly zvažovány pro další testování. Poznámka: Lorcaserin byl identifikován pozitivně v knihovnách GPCR I 5-HT, takže byl také zvažován pro další testování.

obrázek 4

tepelná mapa pozitivních sloučenin identifikovaných ze tří cílených knihoven. % Změna rychlosti je zobrazena pro šest jednotlivých larev z prvního průchodu (1-6). Údaje o průměrné rychlosti od šesti ryb jsou uvedeny pro pokus první a pokus druhý. Léky, které snížily průměrnou rychlost plavání nad prahovou hodnotu a byly netoxické ve třetí studii s použitím Samostatně získávané sloučeniny, jsou zvýrazněny tučně. Tyto pozitivní sloučeniny byly zvažovány pro další testování. Poznámka: Lorcaserin byl identifikován pozitivně v knihovnách GPCR I 5-HT, takže byl také zvažován pro další testování.

screening sekundárního léku pomocí mutantů scn1Lab

monitorování elektrografické mozkové aktivity je „zlatým standardem“ v oblasti epilepsie a lze jej dosáhnout umístěním mikroelektrody do vizuálně identifikované oblasti mozku agaru imobilizovaného zebrafish. Při 5 dpf ukazují lokální záznamy potenciálu larev scn1lab zebrafish v průměru 20 abnormálních příhod elektrografických záchvatů během 10minutové epochy s průměrnou dobou trvání kolem 500 ms. larvy zebrafish scn1Lab byly ošetřeny sloučeninami, které nejprve potvrdily potlačení pohybového chování, a poté byly podrobeny monitorování lokálního potenciálu pole. Trazodon, lorcaserin a detomidin potlačily frekvenci těchto elektrografických záchvatů (obr. 5A). Lorcaserin a trazodon také prodloužily trvání těchto elektrografických záchvatů, i když v těchto experimentech byly epileptické příhody vzácné (obr. 5B A C). Reprezentativní EEG nahrávací epochy jsou znázorněny na obr. 5C; MK-801 A TCB-2 zvýšily frekvenci elektrografických záchvatů. Pankuronium (paralyzující látka antagonisty nikotinových acetylcholinových receptorů), tetrakain (lokální anestetikum), lidokain (anestetikum blokující sodíkové kanály), Loperamid (agonista periferních opioidních receptorů) a rotundin (antagonista receptoru D1) byly klasifikovány jako „falešně pozitivní“, protože nedokázaly potlačit aktivitu elektrografických záchvatů.

obrázek 5

elektrofyziologický test k identifikaci léků, které zachraňují fenotyp mutantní epilepsie scn1Lab. Sloupcové grafy ukazující (a) číslo a (B) trvání epileptiformních příhod v 10minutové nahrávací epoše pro larvy scn1Lab vystavené lorcaserinu (n = 8), trazodonu (n = 10), MK-801 (n = 4), TCB-2 (n = 9), pankuroniu (n = 8), tetrakainu (n = 4), lidokainu (n = 6), loperamidu (N = 8), detomidinu (n = 5), rotundinu (N = 8). n = 4), nebo scn1lab mutanty (n = 20). Graf představuje průměr ± SEM. Studentův nepárový t-test nebo Mann-Whitney rank sum test byly použity *P < 0,05. (C) reprezentativní epochy záznamu elektrod v terénu (10 min) jsou zobrazeny pro čtyři sloučeniny s významnými změnami frekvence událostí ve srovnání s neošetřeným mutantem scn1lab zebrafish (červená). Záznamy byly získány elektrodou umístěnou do předního mozku agarem imobilizovaných larev scn1Lab, které dříve vykazovaly potlačené chování podobné záchvatům v testu lokomoce.

obrázek 5

elektrofyziologický test k identifikaci léků, které zachraňují fenotyp mutantní epilepsie scn1Lab. Sloupcové grafy ukazující (a) číslo a (B) trvání epileptiformních příhod v 10minutové nahrávací epoše pro larvy scn1Lab vystavené lorcaserinu (n = 8), trazodonu (n = 10), MK-801 (n = 4), TCB-2 (n = 9), pankuroniu (n = 8), tetrakainu (n = 4), lidokainu (n = 6), loperamidu (N = 8), detomidinu (n = 5), rotundinu (N = 8). n = 4), nebo scn1lab mutanty (n = 20). Graf představuje průměr ± SEM. Studentův nepárový t-test nebo Mann-Whitney rank sum test byly použity *P < 0,05. (C) reprezentativní epochy záznamu elektrod v terénu (10 min) jsou zobrazeny pro čtyři sloučeniny s významnými změnami frekvence událostí ve srovnání s neošetřeným mutantem scn1lab zebrafish (červená). Záznamy byly získány elektrodou umístěnou do předního mozku agarem imobilizovaných larev scn1Lab, které dříve vykazovaly potlačené chování podobné záchvatům v testu lokomoce.

terciární screening k identifikaci slibných sloučenin olova pro kliniku

trazodon a lorcaserin, dvě sloučeniny schválené FDA s potenciálem pro off-label aplikaci u Dravetova syndromu, byly vyšetřeny v rozmezí koncentrací (10-750 µM) ve dvou časových bodech (30 a 90 min) v testu lokomoce. Detomidin, konský trankvilizér s malým translačním potenciálem, nebyl dále zvažován. Trazodon byl účinný v závislosti na koncentraci a dosáhl maximální účinnosti ∼80% redukce při 250 µM (90 min) a 500 µM (30 min). Toxicita byla pozorována při 750 µM (obr. 6A). Lorcaserin měl maximální účinnost ∼50% snížení rychlosti při 10 µM (90 min). Toto potlačení záchvatového chování bylo udržováno na 100 a 250 µM (90 minut) a toxicita byla pozorována nad 500 µM (obr. 6B); 30 min expozice byla účinná pouze při koncentraci 500 µM. Trazodon a lorcaserin přešli na další test bezpečnosti a účinnosti zahrnující vymývací fázi v našem monitorovacím systému integrované platformy Zebrafish Activity Platform (iZAP)na bázi mikrofluidů (Hong et al., 2016). Zde jsou larvy mutantů scn1Lab zachyceny v záznamových kanálech a monitorovány neinvazivně pomocí integrovaných povrchových elektrod. Výchozí záchvatová aktivita byla stanovena pro mutanty současně, poté byl 250 µM trazodon nebo lorcaserin perfundován do mikrofluidních komor. Trazodon snížil záchvatovou aktivitu o 89,0 ± 9,1% (n = 5) a léčba lorcaserinem ukázala 27.2 ± 15,7% suprese (n = 5) během 2-h léčebného období. Aktivita se vrátila na výchozí hodnoty během následujícího vymývacího období (obr. 7). Mutantní larvy byly poté uvolněny ze systému iZAP a bylo pozorováno, že jsou zdravé a volně plavou. Jako kontrolní experiment byly provedeny podobné studie s expozicí 250 µM ethosuximidu-AED, který není účinný při potlačování záchvatů spojených s Dravetovým syndromem. Nebylo zaznamenáno žádné potlačení aktivity elektrografických záchvatů (zvýšení o 4, 5 ± 3, 2%; n = 6 mutantů scn1Lab; Doplňkový Obr. 3).

obrázek 6

hodnocení dávkové odpovědi domnělých antiepileptik u scn1lab mutant zebrafish. Předpokládané antiepileptické sloučeniny trazodon a lorcaserin byly testovány na účinnost u 5 DPF scn1Lab mutant zebrafish. Chemická struktura pro každou sloučeninu je znázorněna (A A B). Grafy ukazují změnu střední rychlosti nad pěti koncentracemi (C) trazodonu a (D) lorcaserinu. Lokomoce byla zaznamenána po dobu 10 minut po expozici 30 minut (modré pruhy) a 90 minut (žluté pruhy). Toxicita je indikována přerušovanými pruhy. Každý sloupec představuje střední změnu rychlosti ± SEM ze tří nezávislých experimentů. Prahová hodnota pro snížení rychlosti je ≥ 40% (červená čára). Reprezentativní sledovací grafy jsou zobrazeny z jediného experimentu šesti individuálních 5 DPF scn1lab zebrafish na začátku a po 30 min a 90 min expozici 250 µM (E) trazodonu nebo (F) lorcaserinu. Celkový pohyb je zobrazen po dobu 10 minut záznamu epochy.

obrázek 6

hodnocení dávkové odpovědi domnělých antiepileptik u scn1lab mutant zebrafish. Předpokládané antiepileptické sloučeniny trazodon a lorcaserin byly testovány na účinnost u 5 DPF scn1Lab mutant zebrafish. Chemická struktura pro každou sloučeninu je znázorněna (A A B). Grafy ukazují změnu střední rychlosti nad pěti koncentracemi (C) trazodonu a (D) lorcaserinu. Lokomoce byla zaznamenána po dobu 10 minut po expozici 30 minut (modré pruhy) a 90 minut (žluté pruhy). Toxicita je indikována přerušovanými pruhy. Každý sloupec představuje střední změnu rychlosti ± SEM ze tří nezávislých experimentů. Prahová hodnota pro snížení rychlosti je ≥ 40% (červená čára). Reprezentativní sledovací grafy jsou zobrazeny z jediného experimentu šesti individuálních 5 DPF scn1lab zebrafish na začátku a po 30 min a 90 min expozici 250 µM (E) trazodonu nebo (F) lorcaserinu. Celkový pohyb je zobrazen po dobu 10 minut záznamu epochy.

Obrázek 7

iZAP EEG měření scn1Lab během léčby a vymývání trazodonem a lorcaserinem. (A) grafy časové domény a (B) grafy kmitočtové domény reprezentativního potenciálu pole měřeného z jednoho 5 DPF scn1lab mutantu ošetřeného 250 µM trazodonem. Vložená fotografie ukazuje larvu umístěnou pod integrovanými povrchovými elektrodami iZAP, referenční elektrodou a zachycovacím kanálem. (C) reprezentativní zoomované pole potenciální grafy výchozí, trazodon a promývací fáze. Stejná data jsou ukázána pro reprezentativní individuální larvu mutantů scn1Lab léčenou 250 µM lorcaserinem. Během 2-h léčebného okna byla pozorována tendence ke snížení účinnosti při prodloužené expozici lorcaserinu (D-F).

Obrázek 7

iZAP EEG měření scn1Lab během léčby a vymývání trazodonem a lorcaserinem. (A) grafy časové domény a (B) grafy kmitočtové domény reprezentativního potenciálu pole měřeného z jednoho 5 DPF scn1lab mutantu ošetřeného 250 µM trazodonem. Vložená fotografie ukazuje larvu umístěnou pod integrovanými povrchovými elektrodami iZAP, referenční elektrodou a zachycovacím kanálem. (C) reprezentativní zoomované pole potenciální grafy výchozí, trazodon a promývací fáze. Stejná data jsou ukázána pro reprezentativní individuální larvu mutantů scn1Lab léčenou 250 µM lorcaserinem. Během 2-h léčebného okna byla pozorována tendence ke snížení účinnosti při prodloužené expozici lorcaserinu (D-F).

5-exprese HT receptoru u larev zebrafish

protože clemizol má významnou vazebnou afinitu k HTR2A a HTR2B a trazodon i lorcaserin jsou signalizační modulátory 5-HT, snažili jsme se potvrdit expresi těchto receptorů u zebrafish. Zarovnání proteinové sekvence lidských a zebrafish HTR2 receptorů odhalilo evoluční konzervaci s ortology zebrafish, s Htr2aa a Htr2ab vykazujícími 59,3% proteinovou identitu s lidským HTR2A; a jediný HTR2B ortolog, Htr2b vykazující 62,0% proteinovou identitu. Kvantifikace úrovně exprese htr2 pomocí izolovaných hlav nebo ocasů 5 DPF divokých nebo scn1lab mutantních larev odhalila obohacenou expresi htr2a a htr2cl1 v hlavě. Podobné výsledky byly získány z dospělého mozku divokého typu zebrafish, protože mutantní larvy nepřežijí do dospělosti (Doplňkový obr. 4).

snížení frekvence záchvatů u pacientů s Dravetovým syndromem

Dravetův syndrom je katastrofická dětská epilepsie a vzácná porucha (http://www.rarediseases.org/) s oslabujícími výsledky včetně neřešitelné epilepsie, vážně omezeného kognitivního vývoje a rizika SUDEP. Naše předklinická data potvrzují, že modulace 5-HT signalizace může potlačit záchvaty spojené se ztrátou mutací SCN1A. Protože identifikované modulátory 5-HT jsou sloučeniny schválené FDA se známými bezpečnostními profily, léčba těmito repurposed léky by mohla změnit frekvenci záchvatů u dětí s Dravetovým syndromem. Tento translační přístup se zaměřuje na vzácná a ničivá onemocnění, u nichž nejsou proveditelné rozsáhlé klinické studie (Dunoyer, 2011; Parker et al ., 2013).

protože klemizol není v současné době vyráběn nebo dostupný ve formulaci klinického stupně a trazodon může v závislosti na koncentraci působit jako agonista nebo antagonista receptoru 5-HT (Maj et al ., 1979; Marcoli et al., 1998), rozhodli jsme se vyhodnotit Belviq® (lorcaserin) v rámci programu compassionate use off-label u malé populace dětí s Dravetovým syndromem. Ukázalo se, že tyto děti jsou rezistentní vůči nejméně pěti schváleným AED. Pět dětí (průměrný věk: 11,8 let; rozmezí: 7-18 let) heterozygotní pro deleci v SCN1A bylo prospektivně léčeno přípravkem Belviq® a podélně sledováno v dětské nemocnici Colorado (Aurora, CO). Léčebný protokol byl schválen Colorado Medical Institutional Review Board (COMIRB) a rodiče pacientů s Dravetovým syndromem písemně souhlasili s účastí jejich dítěte. Retrospektivně jsme přezkoumali počet atonických, myoklonických a generalizovaných tonicko-klonických záchvatů (GTC), vedlejších účinků a souběžných AED.

klinické charakteristiky Dravetova syndromu děti léčené přípravkem Belviq® jsou shrnuty v tabulce 1. Mezi pěti pacienty léčenými přípravkem Belviq®nedošlo k žádným úmrtím a přípravek Belviq® byl dobře snášen bez závažných nežádoucích účinků způsobujících ukončení léčby. Během léčby přípravkem Belviq® byl jeden pacient zpočátku bez záchvatů po dobu 3 týdnů, jeden pacient byl bez záchvatů po dobu 2 týdnů a třetí pacient měl 1-2 dny bez záchvatů týdně. U všech pěti pacientů došlo ke snížení celkového počtu záchvatů. Generalizované tonicko-klonické záchvaty byly významně sníženy u pacientů 1, 2 a 3. Pacient 2 skutečně zaznamenal 90% snížení generalizovaných tonicko-klonických záchvatů bez nutnosti záchranných léků. Dva pacienti zůstávají na přípravku Belviq® bez zvýšení frekvence záchvatů a podle očekávání byl nejčastějším zaznamenaným nežádoucím účinkem snížená chuť k jídlu. Jeden pacient znovu zahájil léčbu podruhé s dočasným zlepšením na krátkou dobu a poté se zúžil.

Tabulka 1

Dravetův syndrom pacienti léčení přípravkem Belviq® (lorcaserin) vykazují sníženou frekvenci záchvatů

trpělivý . 1 . 2 . 3 . 4 . 5 .
věk (roky) 10 18 10 7 14
hmotnost (kg) 28 46 23 24 35
dávka (mg / kg / den) 0.25 0.27 0.19 0.32 0.31
Prior treatments CLZ CZP KD LMT LVT PRM OXC RUF TPX VPA CBZ CBD CLZ CLB CZP FBM LMT LVT PRM PHB TPM VPA CC KD VNS ESM FBM LMT LVT MSM VPA VMP ZNM KD CZP ESM LVT LZP STP TPM ZNM KD CBZ FBM GBP LCM LMT LVT OXC PHB PRED RUF STP VNS VPM ZNM KD
Concurrent AEDs CLB STP VPA CZP STP ZNM KD TPM VPA BRO CBD CLB VPA CLB TPX VPA
Prior seizure frequency FS: 50/day MS: četné denní MS: denní AS: 12 / h MS: konstantní po celý den
GTC klastry: 1 / měsíc FS + GTC: 10 / měsíc (vyžaduje záchranné léky) GTC záchvaty: 100 / měsíc (klastry 7-10) FS: 3-5 / týden GTC záchvaty: 1-2 / týden
NCS: 1 / měsíc
frekvence záchvatů po léčbě: první 3 měsíce bez záchvatů počáteční 3 týdny, shluk záchvatů pak znovu bez záchvatů po dobu 2 týdnů bez záchvatů po dobu 2 týdnů GTC záchvaty: 46 / měsíc (GTC shluky 1-3 záchvaty) 1-2 dny bez záchvatů / týden MS: zpočátku snížené ráno, pak se zvyšuje na konstantní po celé pozdní odpoledne
shluk záchvatů jednou měsíčně s (FS, VOP) MS: příležitostně MS: denně AS nebo FS: 3 / měsíc VOP: 1-2 / týden
FS + GTC: 1 / měsíc (žádné záchranné léky) VOP: 1-2 / den
NCS: 1 / měsíc
frekvence záchvatů po léčbě: po prvních 3 měsících postupné zvyšování záchvatů s návratem k výchozí frekvenci MS: klastry 1-2 / týden záchvaty se postupně snižovaly na 16 / měsíc s některými noci bez záchvatů, poté se záchvaty zvýšily na výchozí hodnotu postupné zvyšování záchvatů, dny bez záchvatů se zastavily 9 měsíců po léčbě beze změny, Belviq® se zúžil bez změny frekvence záchvatů
FS + GTC: 1-2 / měsíc a (nevyžadují se žádné záchranné léky) při zastavení léčby nedošlo ke zvýšení záchvatů
trvání léčby (měsíce) 12 měsíců, stále užíváte 12 měsíců, stále užíváte 14 měsíců 13 měsíců 9 měsíců
restartován kvůli zvýšeným záchvatům léčeným po dobu 2 měsíců, přestal se účastnit jiné studie s léky
nežádoucí účinky žádné žádné zvracení a snížená chuť k jídlu snížená chuť k jídlu snížená chuť k jídlu
trpělivý . 1 . 2 . 3 . 4 . 5 .
věk (roky) 10 18 10 7 14
hmotnost (kg) 28 46 23 24 35
dávka (mg/kg/den) 0.25 0.27 0.19 0.32 0.31
Prior treatments CLZ CZP KD LMT LVT PRM OXC RUF TPX VPA CBZ CBD CLZ CLB CZP FBM LMT LVT PRM PHB TPM VPA CC KD VNS ESM FBM LMT LVT MSM VPA VMP ZNM KD CZP ESM LVT LZP STP TPM ZNM KD CBZ FBM GBP LCM LMT LVT OXC PHB PRED RUF STP VNS VPM ZNM KD
Concurrent AEDs CLB STP VPA CZP STP ZNM KD TPM VPA BRO CBD CLB VPA CLB TPX VPA
Prior seizure frequency FS: 50/day MS: četné denní MS: denní AS: 12 / h MS: konstantní po celý den
GTC klastry: 1 / měsíc FS + GTC: 10 / měsíc (vyžaduje záchranné léky) GTC záchvaty: 100 / měsíc (klastry 7-10) FS: 3-5 / týden GTC záchvaty: 1-2 / týden
NCS: 1 / měsíc
frekvence záchvatů po léčbě: první 3 měsíce bez záchvatů počáteční 3 týdny, shluk záchvatů pak znovu bez záchvatů po dobu 2 týdnů bez záchvatů po dobu 2 týdnů GTC záchvaty: 46 / měsíc (GTC shluky 1-3 záchvaty) 1-2 dny bez záchvatů / týden MS: zpočátku snížené ráno, pak se zvyšuje na konstantní po celé pozdní odpoledne
shluk záchvatů jednou měsíčně s (FS, VOP) MS: příležitostně MS: denně AS nebo FS: 3 / měsíc VOP: 1-2 / týden
FS + GTC: 1 / měsíc (žádné záchranné léky) VOP: 1-2 / den
NCS: 1 / měsíc
frekvence záchvatů po léčbě: po prvních 3 měsících postupné zvyšování záchvatů s návratem k výchozí frekvenci MS: klastry 1-2 / týden záchvaty se postupně snižovaly na 16 / měsíc s některými noci bez záchvatů, poté se záchvaty zvýšily na výchozí hodnotu postupné zvyšování záchvatů, dny bez záchvatů se zastavily 9 měsíců po léčbě beze změny, Belviq® se zúžil bez změny frekvence záchvatů
FS + GTC: 1-2 / měsíc a (nevyžadují se žádné záchranné léky) při zastavení léčby nedošlo ke zvýšení záchvatů
trvání léčby (měsíce) 12 měsíců, stále užíváte 12 měsíců, stále užíváte 14 měsíců 13 měsíců 9 měsíců
restartován kvůli zvýšeným záchvatům léčeným po dobu 2 měsíců, přestal se účastnit jiné studie s léky
nežádoucí účinky žádné none Vomiting and decreased appetite Decreased appetite Decreased appetite

AS = atonic seizures; BRO = bromides; CBD = cannabidiol; CBZ = carbamazepine; CLB = clobazam; CZP = clonazepam; CLZ = clorazepate; CC = corpus callosotomy; ESM = ethosuximide; FBM = felbamate; FS = focal seizures; GBP = gabapentin; GTC = generalized tonic clonic seizures; KD = ketongenic diet; LCM = lacosamide; LMT = lamotrigine; LVT = levitiracetam; LZP = lorazepam; MS = myoclonic seizures; MSM = methosuximide; NCS = non-convulsive status; OXC = oxcarbazipine; PHB = phenobarbital; PRM = primodone; PRED = predinisone; RFM = rufinamide; STP = stiripentol; TPM = topiramate; VPA = valproic acid; VNS = vagus nerve stimulator; VPM = verapamil; ZNM = zonisamide.

Table 1

Dravet Syndrome patients treated with Belviq® (lorcaserin) show reduced seizure frequency

Patient . 1 . 2 . 3 . 4 . 5 .
věk (roky) 10 18 10 7 14
hmotnost (kg) 28 46 23 24 35
dávka (mg / kg / den) 0.25 0.27 0.19 0.32 0.31
Prior treatments CLZ CZP KD LMT LVT PRM OXC RUF TPX VPA CBZ CBD CLZ CLB CZP FBM LMT LVT PRM PHB TPM VPA CC KD VNS ESM FBM LMT LVT MSM VPA VMP ZNM KD CZP ESM LVT LZP STP TPM ZNM KD CBZ FBM GBP LCM LMT LVT OXC PHB PRED RUF STP VNS VPM ZNM KD
Concurrent AEDs CLB STP VPA CZP STP ZNM KD TPM VPA BRO CBD CLB VPA CLB TPX VPA
Prior seizure frequency FS: 50/day MS: četné denní MS: denní AS: 12 / h MS: konstantní po celý den
GTC klastry: 1 / měsíc FS + GTC: 10 / měsíc (vyžaduje záchranné léky) GTC záchvaty: 100 / měsíc (klastry 7-10) FS: 3-5 / týden GTC záchvaty: 1-2 / týden
NCS: 1 / měsíc
frekvence záchvatů po léčbě: první 3 měsíce bez záchvatů počáteční 3 týdny, shluk záchvatů pak znovu bez záchvatů po dobu 2 týdnů bez záchvatů po dobu 2 týdnů GTC záchvaty: 46 / měsíc (GTC shluky 1-3 záchvaty) 1-2 dny bez záchvatů / týden MS: zpočátku snížené ráno, pak se zvyšuje na konstantní po celé pozdní odpoledne
shluk záchvatů jednou měsíčně s (FS, VOP) MS: příležitostně MS: denně AS nebo FS: 3 / měsíc VOP: 1-2 / týden
FS + GTC: 1 / měsíc (žádné záchranné léky) VOP: 1-2 / den
NCS: 1 / měsíc
frekvence záchvatů po léčbě: po prvních 3 měsících postupné zvyšování záchvatů s návratem k výchozí frekvenci MS: klastry 1-2 / týden záchvaty se postupně snižovaly na 16 / měsíc s některými noci bez záchvatů, poté se záchvaty zvýšily na výchozí hodnotu postupné zvyšování záchvatů, dny bez záchvatů se zastavily 9 měsíců po léčbě beze změny, Belviq® se zúžil bez změny frekvence záchvatů
FS + GTC: 1-2 / měsíc a (nevyžadují se žádné záchranné léky) při zastavení léčby nedošlo ke zvýšení záchvatů
trvání léčby (měsíce) 12 měsíců, stále užíváte 12 měsíců, stále užíváte 14 měsíců 13 měsíců 9 měsíců
restartován kvůli zvýšeným záchvatům léčeným po dobu 2 měsíců, přestal se účastnit jiné studie s léky
nežádoucí účinky žádné žádné zvracení a snížená chuť k jídlu snížená chuť k jídlu snížená chuť k jídlu
trpělivý . 1 . 2 . 3 . 4 . 5 .
věk (roky) 10 18 10 7 14
hmotnost (kg) 28 46 23 24 35
dávka (mg/kg/den) 0.25 0.27 0.19 0.32 0.31
Prior treatments CLZ CZP KD LMT LVT PRM OXC RUF TPX VPA CBZ CBD CLZ CLB CZP FBM LMT LVT PRM PHB TPM VPA CC KD VNS ESM FBM LMT LVT MSM VPA VMP ZNM KD CZP ESM LVT LZP STP TPM ZNM KD CBZ FBM GBP LCM LMT LVT OXC PHB PRED RUF STP VNS VPM ZNM KD
Concurrent AEDs CLB STP VPA CZP STP ZNM KD TPM VPA BRO CBD CLB VPA CLB TPX VPA
Prior seizure frequency FS: 50/day MS: četné denní MS: denní AS: 12 / h MS: konstantní po celý den
GTC klastry: 1 / měsíc FS + GTC: 10 / měsíc (vyžaduje záchranné léky) GTC záchvaty: 100 / měsíc (klastry 7-10) FS: 3-5 / týden GTC záchvaty: 1-2 / týden
NCS: 1 / měsíc
frekvence záchvatů po léčbě: první 3 měsíce bez záchvatů počáteční 3 týdny, shluk záchvatů pak znovu bez záchvatů po dobu 2 týdnů bez záchvatů po dobu 2 týdnů GTC záchvaty: 46 / měsíc (GTC shluky 1-3 záchvaty) 1-2 dny bez záchvatů / týden MS: zpočátku snížené ráno, pak se zvyšuje na konstantní po celé pozdní odpoledne
shluk záchvatů jednou měsíčně s (FS, VOP) MS: příležitostně MS: denně AS nebo FS: 3 / měsíc VOP: 1-2 / týden
FS + GTC: 1 / měsíc (žádné záchranné léky) VOP: 1-2 / den
NCS: 1 / měsíc
frekvence záchvatů po léčbě: po prvních 3 měsících postupné zvyšování záchvatů s návratem k výchozí frekvenci MS: klastry 1-2 / týden záchvaty se postupně snižovaly na 16 / měsíc s některými noci bez záchvatů, poté se záchvaty zvýšily na výchozí hodnotu postupné zvyšování záchvatů, dny bez záchvatů se zastavily 9 měsíců po léčbě beze změny, Belviq® se zúžil bez změny frekvence záchvatů
FS + GTC: 1-2 / měsíc a (nevyžadují se žádné záchranné léky) při zastavení léčby nedošlo ke zvýšení záchvatů
trvání léčby (měsíce) 12 měsíců, stále užíváte 12 měsíců, stále užíváte 14 měsíců 13 měsíců 9 měsíců
restartován kvůli zvýšeným záchvatům léčeným po dobu 2 měsíců, přestal se účastnit jiné studie s léky
nežádoucí účinky žádné none Vomiting and decreased appetite Decreased appetite Decreased appetite

AS = atonic seizures; BRO = bromides; CBD = cannabidiol; CBZ = carbamazepine; CLB = clobazam; CZP = clonazepam; CLZ = clorazepate; CC = corpus callosotomy; ESM = ethosuximide; FBM = felbamate; FS = focal seizures; GBP = gabapentin; GTC = generalized tonic clonic seizures; KD = ketongenic diet; LCM = lacosamide; LMT = lamotrigine; LVT = levitiracetam; LZP = lorazepam; MS = myoclonic seizures; MSM = methosuximide; NCS = nekonvulzivní stav; OXC = oxkarbazipin; PHB = fenobarbital; PRM = primodon; PRED = predinison; RFM = rufinamid; STP = stiripentol; TPM = topiramát; VPA = kyselina valproová; VNS = stimulátor vagusového nervu; VPM = verapamil; ZNM = zonisamid.

diskuse

Clemizol, antihistaminikum první generace objevené v 1950 s (Zierz et al ., 1952), byl identifikován jako potenciální terapeut pro léčbu Dravetova syndromu pomocí scn1Lab mutant zebrafish k screeningu repurposed knihoven léčiv (Baraban et al., 2013; Dinday et al., 2015). Zde jsme potvrdili antiepileptickou aktivitu klemizolu pomocí druhého modelu scn1 zebrafish mutant. Bohužel je klemizol rychle metabolizován u myší s plazmatickým poločasem <10 min (ve srovnání s 3, 4 h u lidí) (Nishimura et al ., 2013), omezující jeho hodnocení v myších modelech. Úspěšně se používá jako antihistaminikum (Zierz et al., 1952; Jacques et al., 1960) s akutními a chronickými studiemi vykazujícími nízký stupeň toxicity (Finkelstein et al., 1960), clemizol se již nevyrábí a v současné době není k dispozici pro klinické podávání mimo označení. Chybí prostředky k efektivnímu vyhodnocení klemizolu v preklinických modelech hlodavců, použili jsme zebrafish pro cílové zapojení (5-HT receptory) a identifikaci příbuzných léčiv (trazodon a lorcaserin) s vhodnými bezpečnostními profily usnadňujícími rychlý překlad do klinické aplikace. Je také popsáno soucitné použití, předepisování přípravku Belviq® (lorcaserin) lékařsky neřešitelným pacientům s Dravetovým syndromem.

antagonisté Antihistaminikového H1-receptoru jsou obvykle kontraindikováni u pediatrických pacientů (Miyata et al ., 2011) a screening těchto léků potvrdil jejich neschopnost potlačit (a v některých případech zhoršit) záchvaty v scn1 zebrafish. Vazebná data odhalila dříve neznámou klemizolovou afinitu k receptorům HTR2A a/nebo HTR2B. Následná fenotypová obrazovka cílených knihoven identifikovala dvě 5-HT-modulační sloučeniny, trazodon a lorcaserin, schopné potlačit behaviorální a elektrofyziologické záchvaty způsobem srovnatelným s klemizolem. Belviq® (lorcaserin) je agonista HTR2C schválený FDA předepsaný pro chronickou léčbu hmotnosti (Thomsen et al ., 2008). Desyrel® (trazodon) je také antidepresivum schválené FDA, které se běžně předepisuje pro poruchy spánku (Mendelson, 2005). Často je klasifikován jako inverzní antagonista HTR2A a HTR2C a inhibitor vychytávání 5-HT (Stahl, 2009). Studie na potkanech však naznačují, že trazodon nebo jeho metabolit metachlorfenylpiperazin (mCPP) mohou působit jako agonista HTR2C při vyšších koncentracích (Maj et al., 1979; Marcoli et al., 1998). Zejména bylo dříve prokázáno, že chronická léčba trazodonem chrání před elektrokonvulzivně indukovanými záchvaty u myší (Chavan et al ., 2010; Borowicz et al., 2012), podporující naše data z scn1lab mutant zebrafish. Účinek clemizolu zprostředkovaný receptorem 5-HT je také v souladu s nedávnou fenotypovou obrazovkou, kde se ukázalo, že modulátory serotonergní signalizace (včetně klemizolu)jsou účinnou léčbou v preklinickém modelu Machado-Josephovy choroby (Teixeira-Castro et al ., 2015); a studie zde naznačují, že clemizol a trazodon vyžadují další vývoj pro testování mimo označení u pacientů s Dravetovým syndromem.

naše výsledky také přispívají k rostoucímu množství důkazů naznačujících modulaci serotonergní signalizace jako silného supresoru záchvatové aktivity, zejména u katastrofických dětských epilepsií, jako je Dravetův syndrom. Nedávno bylo 7 z 10 pacientů léčených nízkou dávkou blokátorem zpětného vychytávání 5-HT fenfluraminem hlášeno, že jsou bez záchvatů po dobu 1 roku (Ceulemans et al ., 2016). U dvou z těchto pacientů bylo hlášeno mírné zesílení jedné nebo dvou srdečních chlopní v souladu s možným vztahem mezi užíváním fenfluraminu a plicní hypertenzí (Douglas et al ., 1981; Ceulemans et al., 2016). U lidí jsou HTR2A a HTR2C exprimovány v CNS, zatímco htr2b exprese je obohacena v srdci (Lambe et al., 2011; Meltzer a kol., 2013). Přesněji řečeno, HTR2C je exprimován na subpopulaci inhibičních interneuronů (Liu et al ., 2007) a aktivace těchto receptorů pomocí 5-HT zvyšuje synaptickou inhibici zprostředkovanou GABA (Boothman et al., 2006) tj. antiepileptický mechanismus účinku, který je základem mnoha běžně předepisovaných antiepileptik. Většina preklinických studií skutečně naznačuje, že aktivace receptorů HTR2A a/nebo htr2c má antiepileptické účinky (Gharedaghi et al ., 2014; Guiard a kol., 2015), což je rozumný mechanismus účinku spojující klemizol, lorcaserin, trazodon a blokátor zpětného vychytávání 5-HT fenfluramin (Dinday et al ., 2015; Ceulemans et al., 2016). Je zajímavé, že exprese htr2b v mozku zebrafish byla relativně nízká, což dále naznačuje, že tato léčiva potenciálně vykazují antiepileptickou aktivitu prostřednictvím aktivace htr2a nebo htr2c receptoru. Je zajímavé, že studie u Drosophila knock-in mušek nesoucích lidskou mutaci K1270T SCN1A v genu para sodíkového kanálu ukázaly, že suplementace prekurzorem 5-HT (5-hydroxytryptofan)zachraňuje fenotyp záchvatů vyvolaný teplem (Schutte et al ., 2014). Navíc nedávná studie používající mutanty scn1Lab hodnotila 13 signalizačních sloučenin 5-HT a také navrhla potenciální antiepileptickou roli pro modulátory signalizace 5-HT (Sourbron et al ., 2016). Tyto poslední studie zebrafish však používaly zásadně odlišný protokol (24 h versus 30-90 min expozice léku), který nebyl dříve validován jako úspěšně identifikující AED používané při Dravetově syndromu (benzodiazepiny, valproát, stiripentol, bromidy a ketogenní strava). Navíc koncentrace léků jsou asi 10krát nižší, než prokazujeme, že jsou účinné u zebrafish (Baraban et al ., 2005, 2013; Dinday et al., 2015) a hlášení antiepileptického účinku pro halucinogen TCB-2 (obr. 5), navrhuje, aby přímé srovnání údajů z laboratoří používajících různé postupy bylo interpretováno s opatrností.

celkově jsme dospěli k závěru, že mutantní zebrafish jsou vhodným modelem pro rychlý screening a objev nových AED, které s vhodnými bezpečnostními profily mohou přímo informovat klinickou péči o ohrožené populace pacientů, jako je Dravetův syndrom.

zkratky

    zkratky
  • 5-HT

    serotonin

  • AED

    antiepileptikum

  • dpf

    dny po oplodnění

  • GPCR

    receptor vázaný na G-protein

  • iZAP

    integrovaná platforma pro analýzu zebrafish

poděkování

chtěli bychom poděkovat členům laboratoře Baraban, Brian Grone a Matthew Dinday zejména za užitečné diskuse v průběhu těchto studií.

financování

S. C. B uznává financování z NINDS R01 grant no. NS079214, UCSF Catalyst Award a Raymond & Beverley Sackler Centre Sabbatical Fund.

doplňkový materiál

doplňkový materiál je k dispozici na Brain online.

Baraban
SC
Dinday
MT
Hortopan
GA

.

screening léků u Scn1a zebrafish mutant identifikuje klemizol jako potenciální léčbu Dravetova syndromu

.

Nat Commun
2013

;

4

:

2410

.

Baraban
SC
Taylor
MR
Castro
PA
Baier
H

.

Pentylenetetrazol indukoval změny chování zebrafish, nervové aktivity a exprese c-fos

.

neurovědy
2005

;

131

:

759

68

.

Boothman
L
Raley
J
Denk
F
Hirani
E
Sharp
T

.

In vivo evidence that 5-HT(2C) receptors inhibit 5-HT neuronal activity via a GABAergic mechanism

.

Br J Pharmacol
2006

;

149

:

861

9

.

Borowicz
KK
Gurdziel
E
Czuczwar
SJ

.

trazodon snižuje antikonvulzivní účinek některých klasických antiepileptik v maximálním modelu elektrošoků u myší

.

Farmakol Rep
2012

;

64

:

1136

45

.

Catterall
WA
Kalume
F
Oakley
JC

.

NaV1. 1 kanály a epilepsie

.

J Physiol
2010

;

588

:

1849

59

.

Ceulemans
B
Schoonjans
AS
Marchau
F
Paelinck
BP
Lagae
L

.

pětileté prodloužené sledování u 10 pacientů s Dravetovým syndromem léčených fenfluraminem

.

epilepsie
2016

;

57

:

e 129

34

.

Chavan
VR
Wali
R
Totad
R

.

studie o úloze antagonisty receptoru 5-HT2A a 5-HT2C a účincích současného podávání Fluoxetinů při regulaci generalizovaných záchvatů u albínských potkanů

.

Al Ameen J Med Sci
2010

;

3

:

201

7

.

Cheah
CS
Yu
FH
Westenbroek
RE
Kalume
FK
Oakley
JC
Potter
GB

et al.

specifické vymazání NaV1.1 sodíkové kanály v inhibičních interneuronech způsobují záchvaty a předčasnou smrt v myším modelu Dravetova syndromu

.

Proc Natl Acad Sci USA
2012

;

109

:

14646

51

.

Chiron
C
Marchand
MC
Tran
a
Rey
E
d ‚ Athis
P
Vincent
J

et al.

Stiripentol u těžké myoklonické epilepsie v kojeneckém věku: randomizovaná placebem kontrolovaná studie zaměřená na syndrom

.

studijní skupina STICLO. Lancet
2000

;

356

:

1638

42

.

Dereeper
A
Guignon
V
Blanc
G
Audic
S
bufet
s
Chevenet
F

et al.

Phylogeny.fr: robustní fylogenetická analýza pro nespecialisty

.

Nukleové Kyseliny Res
2008

;

36

:

V 465

9

.

Detyniecki
K
Hirsch
LJ

.

kanabidiol pro epilepsii: snaží se vidět skrz opar

.

Lancet Neurol
2016

;

15

:

235

7

.

Devinsky
O
Marsh
E
Friedman
D
Thiele
E
Laux
L
Sullivan
J

et al.

kanabidiol u pacientů s epilepsií rezistentní na léčbu: otevřená intervenční studie

.

Lancet Neurol
2016

;

15

:

270

8

.

Dinday
MT
Baraban
SC

.

rozsáhlý screening antiepileptických léků na bázi fenotypu v modelu zebrafish dravetova syndromu (1,2,3)

.

eNeuro
2015

;

2

.

Douglas
JG
Munro
JF
Kitchin
AH
Muir
AL
Proudfoot
AT

.

plicní hypertenze a fenfluramin

.

Br Med J (Clin Res Ed)
1981

;

283

:

881

3

.

Dravet
C

.

fenotyp jádra Dravetova syndromu

.

Epilepsie
2011

;

52

(

Suppl 2

):

3

9

.

Dunoyer
M

.

urychlení přístupu k léčbě vzácných onemocnění

.

Nat Rev Drug Discov
2011

;

10

:

475

6

.

Dutton
Sb
Makinson
CD
Papale
LA
Shankar
a
Balakrishnan
B
Nakazawa
k

et al.

preferenční inaktivace Scn1a u parvalbuminových interneuronů zvyšuje náchylnost k záchvatům

.

Neurobiol Dis
2013

;

49

:

211

20

.

Escayg
A
Goldin
AL

.

Scn1a sodíkového kanálu a epilepsie: mutace a mechanismy

.

epilepsie
2010

;

51

:

1650

8

.

Finkelstein
M
Kromer
CM
Sweeney
SA
Delahunt
CS

.

některé aspekty farmakologie clemizol hydrochloridu

.

J Am Pharm Assoc Am Pharm Assoc
1960

;

49

:

18

22

.

Gharedaghi
MH
Seyedabadi
m
Ghia
je
Dehpour
AR
Rahimian
R

.

úloha různých podtypů serotoninových receptorů v náchylnosti k záchvatům

.

Exp Brain Res
2014

;

232

:

347

67

.

Guiard
BP
Di Giovanni
G

.

dysfunkce centrálního serotoninu-2A (5-HT2A) receptoru u deprese a epilepsie: chybějící článek?

.

Přední Farmakol
2015

;

6

:

46

.

Han
S
Tai
C
Westenbroek
RE
Yu
FH
Cheah
CS
Potter
GB

et al.

autistické chování u Scn1a + / – myší a záchrana zvýšenou NEUROTRANSMISÍ zprostředkovanou GABA

.

Příroda
2012

;

489

:

385

90

.

Hodgkin
AL
Huxley
AF

.

kvantitativní popis membránového proudu a jeho aplikace na vedení a excitaci v nervu

.

J Physiol
1952

;

117

:

500

44

.

Hong
s
Lee
P
Baraban
SC
Lee
LP

.

nová dlouhodobá, vícekanálová a neinvazivní elektrofyziologická platforma pro Zebrafish

.

Sci Rep
2016

;

6

:

28248

.

Jacques
AA
Fuchs
VH

.

klinické hodnocení klemizolu u alergické rýmy

.

Int Rec Med
1960

;

173

:

88

91

.

Jiao
J
jang
Y
Shi
Y
Chen
J
Gao
R
Fan
Y

et al.

modelování Dravetova syndromu pomocí indukovaných pluripotentních kmenových buněk (IPSC) a přímo převedených neuronů

.

Hum Mol Genet
2013

;

22

:

4241

52

.

Kalume
F
Yu
FH
Westenbroek
RE
Scheuer
T
Catterall
WA

.

snížený proud sodíku v neuronech Purkinje z myší mutovaných Nav1.1: důsledky pro ataxii u těžké myoklonické epilepsie v kojeneckém věku

.

2007

;

27

:

11065

74

.

Kearney
J

.

náhlá neočekávaná smrt u dravetova syndromu

.

Epilepsie Curr
2013

;

13

:

264

5

.

Kumar
MG
Rowley
S
Fulton
R
Dinday
MT
Baraban
SC
Patel
M

.

Altered glycolysis and mitochondrial respiration in a zebrafish model of dravet syndrome

.

eNeuro
2016

;

3

.

Lambe
EK
Fillman
SG
Webster
MJ
Shannon Weickert
C

.

Serotonin receptor expression in human prefrontal cortex: balancing excitation and inhibition across postnatal development

.

PLoS One
2011

;

6

:

e22799

.

Li
BM
Liu
XR
Yi
YH
Deng
YH
Su
T
Zou
X

et al.

autismus u Dravetova syndromu: prevalence, rysy a vztah k klinickým charakteristikám epilepsie a mentální retardace

.

Epilepsie Behav
2011

;

21

:

291

5

.

Liu
S
Bubar
MJ
Lanfranco
MF
Hillman
GR
Cunningham
KA

.

lokalizace Serotonin2C receptoru v neuronech GABA mediální prefrontální kůry potkanů: důsledky pro pochopení neurobiologie závislosti

.

neurovědy
2007

;

146

:

1677

88

.

Liu
Y
Lopez-Santiago
LF
Yuan
Y
Jones
Jm
Zhang
H
O ‚ Malley
HA

et al.

Dravetův syndrom neurony odvozené od pacienta naznačují nový mechanismus epilepsie

.

Ann Neurol
2013

;

74

:

128

39

.

MacRae
CA
Peterson
RT

.

Zebrafish jako nástroje pro objevování drog

.

Nat Rev Drug Discov
2015

;

14

:

721

31

.

Maj
J
Palider
W
Rawlow

.

Trazodone, a central serotonin antagonist and agonist

.

J Neural Transm
1979

;

44

:

237

48

.

Marcoli
M
Maura
G
Tortarolo
M
Raiteri
M

.

trazodon je silný agonista receptorů 5-HT2C zprostředkovávající inhibici dráhy N-methyl-D-aspartátu/oxidu dusnatého/cyklického GMP v mozečku potkanů

.

J Pharmacol Exp Ther
1998

;

285

:

983

6

.

Meltzer
HY
Roth
BL

.

Lorcaserin a pimavanserin: vznikající selektivita léků cílených na subtyp serotoninového receptoru

.

J Clin Invest
2013

;

123

:

4986

91

.

Mendelson
WB

.

přehled důkazů o účinnosti a bezpečnosti trazodonu při nespavosti

.

J Clin Psychiatrie
2005

;

66

:

469

76

.

Miyata
I
Saegusa
H
Sakurai
M

.

potenciál antagonistů histaminu H1 modifikující záchvaty: klinické pozorování

.

Pediatr Int
2011

;

53

:

706

8

.

Nishimura
T
Hu
Y
Wu
M
Pham
E
Suemizu
H
Elazar
M

et al.

použití chimérických myší s humanizovanými játry k předpovědi metabolismu lidského léčiva a interakce mezi léčivy

.

J Pharmacol Exp Ther
2013

;

344

:

388

96

.

Oakley
JC
Kalume
F
Yu
FH
Scheuer
T
Catterall
WA

.

záchvaty závislé na teplotě a věku v myším modelu těžké myoklonické epilepsie v kojeneckém věku

.

Proc Natl Acad Sci USA
2009

;

106

:

3994

9

.

Parker
WE
Orlova
KA
Parker
WH
Birnbaum
JF
Krymskaya
VP
Goncharov
DA

et al.

Rapamycin zabraňuje záchvatům po depleci STRADA u vzácné neurodevelopmentální poruchy

.

Sci Transl Med
2013

;

5

:

182ra53

.

Peitsaro
N
Sundvik
M
Anichtchik
OV
Kaslin
J
Panula
P

.

identifikace histaminových receptorů H1, H2 a H3 zebrafish a účinky histaminergních ligandů na chování

.

Biochem Pharmacol
2007

;

73

:

1205

14

.

Perez
J
Chiron
C
Musial
C
Rey
E
Blehaut
H
d ‚ Athis
P

et al.

Stiripentol: účinnost a snášenlivost u dětí s epilepsií

.

epilepsie
1999

;

40

:

1618

26

.

Schoonheim
PJ
Arrenberg
AB
Del Bene
F
Baier
H

.

Optogenetická lokalizace a genetická porucha neuronů generujících saccade u zebrafish

.

2010

;

30

:

7111

20

.

Schutte
RJ
Schutte
SS
Algara
J
Barragan
EV
Gilligan
J
Staber
C

et al.

Knock-in model Dravetova syndromu odhaluje konstitutivní a podmíněné snížení proudu sodíku

.

J Neurofyziol
2014

;

112

:

903

12

.

Sourbron
J
Schneider
H
Kecskes
a
Liu
Y
Buening
EM
Lagae
L

et al.

serotonergní modulace jako účinná léčba dravetova syndromu v mutantním modelu zebrafish

.

ACS Chem Neurosci
2016

;

7

:

588

98

.

Stahl
SM

.

mechanismus účinku trazodonu: multifunkční lék

.

CNS Spectr
2009

;

14

:

536

46

.

Tai
C
Abe
Y
Westenbroek
RE
Scheuer
T
Catterall
WA

.

zhoršená excitabilita kortikálních interneuronů exprimujících somatostatin a parvalbumin v myším modelu Dravetova syndromu

.

Proc Natl Acad Sci USA
2014

;

111

:

E3139

48

.

Teixeira-Castro
A
Jalles
a
Esteves
S
Kang
s
da Silva Santos
L
Silva-Fernandes
a

et al.

serotonergní signalizace potlačuje agregaci ataxinu 3 a neurotoxicitu na zvířecích modelech Machado-Josephovy choroby

.

mozek
2015

;

138

:

3221

37

.

Thomsen
WJ
Grottick
AJ
Menzaghi
F
Reyes-Saldana
H
Espitia
S
Yuskin
D

et al.

Lorcaserin, a novel selective human 5-hydroxytryptamine2C agonist: in vitro and in vivo pharmacological characterization

.

J Pharmacol Exp Ther
2008

;

325

:

577

87

.

Winter
MJ
Redfern
WS
Hayfield
aj
Owen
SF
Valentin
JP
Hutchinson
TH

.

validace lokomotorického testu larvální zebrafish pro posouzení odpovědnosti za záchvaty léků v časném stádiu vývoje

.

J Farmakol Toxikol Metody
2008

;

57

:

176

87

.

Yu
FH
Mantegazza
m
Westenbroek
RE
Robbins
CA
Kalume
F
Burton
KA

et al.

snížený sodíkový proud v GABAergních interneuronech v myším modelu těžké myoklonické epilepsie v kojeneckém věku

.

Nat Neurosci
2006

;

9

:

1142

9

.

Zierz
P
Greither
H

.

klinické hodnocení přípravku allercur, nového antihistaminika

.

Arztl Wochensch
1952

;

7

:

704

7

.

Napsat komentář

Vaše e-mailová adresa nebude zveřejněna.